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新版TCGA的突变SNP数据下载和整理

新版TCGA的突变SNP数据下载和整理

作者: 医学和生信笔记 | 来源:发表于2022-11-13 21:57 被阅读0次

    关于TCGAbiolinks包的学习前面一共介绍了5篇推文。

    今天继续学习如何使TCGAbiolinks下载和整理MAF格式的突变数据。

    之前的TCGA的MAF文件是可以下载的,每个癌症包含4种软件得到的突变文件:

    之前能下载,现在不能了

    后来就改版了,不让你随便下载了。但其实还是可以下载的,只不过没有那么多选择了!

    现在的情况是每个样本都是一个单独的maf文件,需要下载后自己整理,就像整理表达矩阵那样。

    MAF文件的下载

    但是现在我们有TCGAbiolinks,根本不需要自己动手,直接三步走即可得到我们需要的MAF文件。

    library(TCGAbiolinks)
    
    query <- GDCquery(
        project = "TCGA-COAD", 
        data.category = "Simple Nucleotide Variation",
        data.type = "Masked Somatic Mutation",
        access = "open"
    )
      
    GDCdownload(query)
      
    GDCprepare(query, save = T,save.filename = "TCGA-COAD_SNP.Rdata")
    

    这样得到的这个Rdata文件其实是一个数据框,不过由于内容和之前的MAF文件一模一样,所以也是可以直接用maftools读取使用的。

    maftools是一个非常强大的突变数据可视化和分析的R包,这个包在bioconductor上,需要的自行安装。

    无缝对接maftools

    由于我们在第一步已经下载过了,所以这里就不用下载了,直接加载保存好的数据。

    我们以TCGA-COAD的数据作为演示。

    library(maftools)
    
    load(file = "./TCGA-SNP/TCGA-COAD_SNP.Rdata")
    
    maf.coad <- data
    

    简单看一下这个数据:

    class(maf.coad)
    ## [1] "data.frame"
    
    dim(maf.coad)
    ## [1] 252664    141
    
    maf.coad[1:10,1:10]
    ##    X1 Hugo_Symbol Entrez_Gene_Id Center NCBI_Build Chromosome Start_Position
    ## 1   1        AGRN         375790    BCM     GRCh38       chr1        1046481
    ## 2   1       ACAP3         116983    BCM     GRCh38       chr1        1295539
    ## 3   1      CALML6         163688    BCM     GRCh38       chr1        1916980
    ## 4   1       PRKCZ           5590    BCM     GRCh38       chr1        2150972
    ## 5   1      WRAP73          49856    BCM     GRCh38       chr1        3635995
    ## 6   1        CHD5          26038    BCM     GRCh38       chr1        6142440
    ## 7   1      CAMTA1          23261    BCM     GRCh38       chr1        7663513
    ## 8   1      ERRFI1          54206    BCM     GRCh38       chr1        8014193
    ## 9   1      SLC2A7         155184    BCM     GRCh38       chr1        9022922
    ## 10  1         PGD           5226    BCM     GRCh38       chr1       10411462
    ##    End_Position Strand Variant_Classification
    ## 1       1046481      +        Frame_Shift_Del
    ## 2       1295539      +      Missense_Mutation
    ## 3       1916980      +                 Silent
    ## 4       2150972      +                 Silent
    ## 5       3635995      +                 Silent
    ## 6       6142440      +      Missense_Mutation
    ## 7       7663513      +                 Silent
    ## 8       8014193      +      Missense_Mutation
    ## 9       9022922      +      Missense_Mutation
    ## 10     10411462      +                 Silent
    

    可以看到是一个data.frame类型的文件。

    这个文件一共有252664行,141列,包含了gene symbol,突变类型,突变位置,导致的氨基酸变化等信息。

    下面就直接用read.maf()函数读取即可,没有任何花里胡哨的操作!

    maf <- read.maf(maf.coad)
    ## -Validating
    ## -Silent variants: 63597 
    ## -Summarizing
    ## --Mutiple centers found
    ## BCM;WUGSC;BCM;WUGSC;BCM;BI--Possible FLAGS among top ten genes:
    ##   TTN
    ##   SYNE1
    ##   MUC16
    ## -Processing clinical data
    ## --Missing clinical data
    ## -Finished in 6.000s elapsed (5.690s cpu)
    

    然后就是进行各种可视化操作,毫无难度:

    plotmafSummary(maf = maf, rmOutlier = TRUE, addStat = 'median', dashboard = TRUE)
    
    image.png

    是不是非常简单,虽然没有直接提供单个癌症的MAF文件,但是使用TCGAbiolinks后,会直接帮我们整理好,没有任何难度。

    如果你由于各种原因不能使用这个包下载数据,那你可以直接用网页下载,然后按照我之前的推文进行整理:TCGA下载和表达矩阵整理:最适合初学者的教程 - 简书 (jianshu.com)

    但是这个方法用在表达谱数据是没有问题的,理论上用在其他类型的数据都是可以的,但是我并没有尝试过,欢迎大家使用后留言。

    如果你在网络上看见一个叫xxx.pl的文件,并且需要付费获取,建议你不要花这个冤枉钱,不值那个价,希望大家多多擦亮眼睛!

    如果你非要用手撕代码的方式自己整理,也是非常简单的,比整理转录组数据的表达矩阵简单100倍。

    自己整理成MAF格式

    首先你要去GDC TCGA的官网下载某个癌症的所有的maf文件,还是以TCGA-COAD为例,下载好之后是这样的:

    image.png

    每个样本第一个文件夹,每个文件夹下面有一个.gz结尾的压缩文件,这个文件解压缩之后就是大家熟悉的.maf文件大,但是只是一个样本的~

    image.png

    把这个.maf文件用VScode打开后是这样的:

    image.png

    不妨多解压几个打开看一看,都是一样的结构,所以就很简单了,把所有的文件读取进来然后直接rbind()即可。

    但是在此之前我们可以先读取一个试试看:

    # 路径必须正确
    tmp <- read.table("G:/tcga/GDCdata/TCGA-COAD/harmonized/Simple_Nucleotide_Variation/Masked_Somatic_Mutation/007c2ae4-bbd2-42c6-ab67-bf016fbddb51/982004b5-52e1-4a69-97d3-25bdcb77b026.wxs.aliquot_ensemble_masked.maf.gz",
                      skip = 7, # 前面7行都不要
                      sep = "\t", # 必须指定
                      header = T # 有行名
                      )
    
    tmp[1:10,1:8]
    ##    Hugo_Symbol Entrez_Gene_Id Center NCBI_Build Chromosome Start_Position
    ## 1        NOC2L          26155    BCM     GRCh38       chr1         945088
    ## 2         SDF4          51150    BCM     GRCh38       chr1        1217753
    ## 3      B3GALT6         126792    BCM     GRCh38       chr1        1233752
    ## 4         MIB2         142678    BCM     GRCh38       chr1        1629520
    ## 5         NADK          65220    BCM     GRCh38       chr1        1765325
    ## 6         GNB1           2782    BCM     GRCh38       chr1        1804562
    ## 7        PANK4          55229    BCM     GRCh38       chr1        2510063
    ## 8       PRXL2B         127281    BCM     GRCh38       chr1        2588386
    ## 9       PRDM16          63976    BCM     GRCh38       chr1        3412316
    ## 10      WRAP73          49856    BCM     GRCh38       chr1        3633442
    ##    End_Position Strand
    ## 1        945088      +
    ## 2       1217753      +
    ## 3       1233752      +
    ## 4       1629520      +
    ## 5       1765325      +
    ## 6       1804562      +
    ## 7       2510063      +
    ## 8       2588386      +
    ## 9       3412316      +
    ## 10      3633442      +                                                                        
    

    非常顺利,和上面那个整理好的格式一模一样,唯一不同就是这个只是一个样本的。

    下面我们就批量读取并合并就好了!

    # 确定文件路径!
    dir.path <- "G:/tcga/GDCdata/TCGA-COAD/harmonized/Simple_Nucleotide_Variation/Masked_Somatic_Mutation"
    
    # 获取所有maf文件路径
    all.maf <- list.files(path = dir.path, pattern = ".gz", 
                          full.names = T, recursive = T)
    
    # 看看前3个
    all.maf[1:3]
    ## [1] "G:/tcga/GDCdata/TCGA-COAD/harmonized/Simple_Nucleotide_Variation/Masked_Somatic_Mutation/007c2ae4-bbd2-42c6-ab67-bf016fbddb51/982004b5-52e1-4a69-97d3-25bdcb77b026.wxs.aliquot_ensemble_masked.maf.gz"
    ## [2] "G:/tcga/GDCdata/TCGA-COAD/harmonized/Simple_Nucleotide_Variation/Masked_Somatic_Mutation/010f9040-294d-4d14-a2b4-80d7a11625dd/5083b949-1bf3-4bc2-bf4f-f668f8a13792.wxs.aliquot_ensemble_masked.maf.gz"
    ## [3] "G:/tcga/GDCdata/TCGA-COAD/harmonized/Simple_Nucleotide_Variation/Masked_Somatic_Mutation/0148fff1-b8af-4bf0-8bcd-de1ff9f750f3/2c16cfe2-bf6d-4a39-af3a-9dfd5ada3e17.wxs.aliquot_ensemble_masked.maf.gz"
    

    然后直接读取就行了,觉得慢可以用data.table::fread()加快速度。

    maf.list <- lapply(all.maf, read.table, 
                       skip = 7, 
                       sep = "\t", 
                       header = T)
    

    然后直接合并即可,如果不放心可以看看列数列名是不是一样,100%一样,我们就不看了。

    # lapply(maf.list, dim)
    
    maf.merge <- do.call(rbind,maf.list)
    

    目前为止看似一切顺利,本以为即将结束,但是没想到横生枝节!

    竟然读取不了,而且我们得到的这个maf.merge竟然只有137665行!和252664行的差距实在是太大了!

    # 读取失败!
    maf1 <- read.maf(maf.merge)
    
    ## -Validating
    ## --Removed 5 duplicated variants
    ## --Non MAF specific values in Variant_Classification column:
    ##   3UTR   DEL T   T   -   novel       TCGA-A6-6781-01A-22D-1924-10    TCGA-A6-6781-10A-01D-1924-10
    

    果然不检查数据是不行的!

    然后只能回过头去看哪里出了问题,通过仔细使用VScode直接打开maf文件和我们读取的文件对比,发现了问题。

    Variant_Classification这一列中,有一些3'UTR / 5'UTR这样的类型,但是在使用read.table()读取的时候竟然识别不出来!

    小丑竟是我自己!

    image.png

    所以直接导致遇到这个之后的所有行都是错位的,而且少了非常多行。

    生气啊!

    但是找到问题之后解决就非常简单,换个函数就行了,我们直接用data.table::fread()读取!

    maf.list <- lapply(all.maf, data.table::fread, 
                       sep = "\t", 
                       header = T,
                       skip = 7 
                       )
    
    maf.merge <- do.call(rbind,maf.list)
    
    dim(maf.merge)
    ## [1] 252664    140
    

    现在就和前面的数据一模一样了,252664行,140列(少了一列是表示来自于第几个样本,没有用)。

    # 读取成功!
    maf1 <- read.maf(maf.merge)
    ## -Validating
    ## -Silent variants: 63597 
    ## -Summarizing
    ## --Mutiple centers found
    ## BCM;WUGSC;BCM;BI;BCM;WUGSC--Possible FLAGS among top ten genes:
    ##   TTN
    ##   SYNE1
    ##   MUC16
    ## -Processing clinical data
    ## --Missing clinical data
    ## -Finished in 3.970s elapsed (3.730s cpu)
    
    plotmafSummary(maf = maf1, rmOutlier = TRUE, addStat = 'median', dashboard = TRUE)
    
    image.png

    简单!下次说说这个maftools的使用。

    觉得有用请多多转发~拒绝不必要的花钱!难道免费的不如付费的香??

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