不啰嗦,直接干货:
样本前处理
a.组织样本:取50~100mg组织样本(黄豆粒大小,若是脂肪组织则需要增加样本量)用液氮研磨至粉末状,转到装有1mL trizol的 1.5 mL RNase-free离心管中,震荡混匀。
b.细胞样本:吸干培养基上去,按1mL trizol/10cm²培养皿的比例加入trizol,并用移液枪吹打数次直至细胞被完全裂解下来。
2.室温静置5min,让RNA可以充分释放。
3.按 1 mL Trizol 加入 200 μL 氯仿,盖好管盖(注意:此次一定要盖好盖子,避免震荡过程中液体渗出)。用手剧烈震荡 15 s,室温放置 3 min;
4.12000 g、4℃离心 15 min;(离心后样本会分三层,最上层是透明的水相,RNA溶在水相中)
5.小心转移上清液(约500 μL)至新的 1.5 mL 无酶离心管中;
6.加入等体积异丙醇,室温静置10min;(若预期RNA量比较少,可加入适量糖原,并于-20℃或-80℃沉淀 过夜;)
7.12000 g、4℃离心 10min;弃掉上清,保留沉淀;
8.加入 1 mL 75%乙醇,涡旋或颠倒混匀;
9.7500 g、4℃离心 5 min;弃掉上清。
10.7500 g、4℃离心 30s;用10ul小枪头尽量吸掉残留的液体。
11.室温静置5~10min,晾干乙醇。(看到RNA变半透明即可)
12.加入适量RNase-free水溶解RNA,室温静置10min;令RNA可以充分溶解。
13.分装少量RNA,剩余RNA冻存到-80℃冰箱备用。
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