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文献解读 | LncRNA经典研究思路

文献解读 | LncRNA经典研究思路

作者: 一只资源喵 | 来源:发表于2020-08-20 09:22 被阅读0次

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    今天这篇文献主要是

    介绍INcRNA功能的原理和原因

    论文:The how and why of lncRNA function: An innate immune perspective(INcRNA功能的原理和原因:先天免疫视角)


    文章来源 | 非编码RNA研究园地(公众号ID:ZKQF-RNA)

    摘要

    下一代测序为人类转录体的组成提供了一个更完整的图像,表明大部分“蓝图”是大量不被理解的非蛋白质编码转录本。这包括新发现的一类基因,称为长非编码RNA(IncRNAs)。

    由于不同物种的印度RNA缺乏序列保守性,这意味着它们在生物学上的重要性最初受到了一些怀疑。IncRNAs通过与蛋白质、RNA、DNA的相互作用或这些相互作用的组合来介导它们的功能。它们的功能通常由它们的定位、序列和/或二级结构决定。

    在这里,我们提供了一个典型的方法,以研究这些基因的复杂性,重点是最近发现的先天免疫领域采取的方法。最后,我们讨论了挑战,以及新技术的出现,这些新技术将继续推动这一领域的发展,并能更深入地了解这类基因的生物学重要性。本文是Kotb Abdelmohsen编辑的题为:控制基因表达的ncRNA专刊的一部分

    导言

    虽然编码基因在免疫细胞功能中的作用已被很好地描述,但是incRNAs在这些过程中的作用才刚刚开始显现。在这里,我们以巨噬细胞激活的生物模型系统为框架,展示了我们如何研究INcRNA生物学。

    我们提供了一个循序渐进的指南,供我们在研究INcRNAs时参考.此外,我们还讨论了挑战,以及新技术的出现,这些新技术正在帮助我们研究这些基因的方式。

    INcRNA的分类和分子功能

    (A)根据它们相对于邻近蛋白质编码基因的基因组位置分类:双向的、基因间的、反义的、内含子的、增强子的、感重叠的。

    (B)图的左下角代表了如何转录调节INcRNA的活动。转录激活被描述为基本的“第一部分”,以及在刺激模式识别受体(PRR)后的炎症激活“第二部分”期间。三个incRNA例子基因显示了A、B和C。

    第三部分描述了INcRNA如何经历差异的异构体表达,这是共同调控的。在激活转录过程中,INcRNA可以进行差异剪接,也可以利用炎症刺激后新的转录起始位点,如脂多糖(LPS)。INcRNA的转录后调控分为三个部分:IV、V和VI。转录完成后,一个INcRNA可以经历几个过程。

    第四部分描述RNA修饰,它可以改变INcRNA分子的结构。这些修饰可以根据细胞的炎症状态添加或删除。

    第五部分描述了miRNA的生物发生过程,其中一个incRNA可以被加工成一个成熟的miRNA。

    第六部分表明,如果一个INcRNA有一个小的开放阅读框(SmORF),它也可以被翻译。

    (C)图的右下角显示了INcRNA在细胞核和细胞质中的调节功能。在活化转录(基本为I部分或炎症II部分)过程中,INcRNA可以抑制基因(mRNA基因A和C)或激活基因(mRNA基因A和B)。

    IncRNA可以是转录因子增强活化的支架,也可以是染色质重构蛋白打开或关闭染色质的支架。INcRNA还可以通过影响稳定性、改变剪接活性、修改修改或甚至影响成熟mRNA的上限来调节mRNA转录的转录第三部分。

    另外,INcRNA可以作为miRNA海绵,间接抑制miRNAs靶向mRNA的表达。最后,在翻译过程中,INcRNA可以通过与核糖体或mRNA转录体结合来调节mRNA的翻译。

    INcRNA的表达操控

    (A)RNA干扰作用于翻译后,在细胞质中降解转录本。(B)Gapmers是由RNA和~10 nt DNA序列的核心片段组成的,对RNase H通路起关键作用。

    (C)CRISPRI使用与KRAB结构域融合的CaS 9催化非活性版本。CRISPRi系统可以针对转录起始位点(TSS)诱导异染色质转录沉默

    CRISPR/Cas9可用于标记(D)剪接位点,或(E)利用两个侧翼gRNAs删除INcRNA基因座的特定区域。

    (F)能在TSS下游插入多腺嘌呤基化信号(3-5),从而导致转录的过早终止。这些多聚(A)信号可以由氧氟沙星位置侧翼,以允许其去除。

    (G)CRISPRa系统可针对转录起始点(TSS)诱导转录激活。

    (H)可以将incRNA序列(CDNA)克隆到带有天然启动子或构成活性启动子的质粒中(E.(EF1a,CMV)。

    根据每一列的副标题中描述的标准比较不同的工具。“靶”描述了INcRNA基因表达的哪些方面是靶向的,例如转录(CRISPRi,C)或转录后沉默(RNAi,A)。

    “可逆转的功能损失?”这个工具在细胞中的沉默作用是可逆的吗?一般来说,只有核酸酶活性的Cas9活性(D)是不可逆的,因为基因座的区域实际上被删除了。

    “表型类型”指的是该工具是否完全关闭了incRNA的表达。亚纯指的是,尽管有一定程度的压制,但仍有某种程度的表达。只有竞争移除该位点才能完全消除其表达。

    击倒核子干扰RNA?涉及到许多群体所做的观察,这些观察表明RNAi在核中并不十分活跃(与其他技术不同)。“表型时间”是指从计划实验到获得表型的时间。

    短:转染RNAi和ASO(A和B)仍然是最快速的表型途径,因为它们不需要克隆或修改细胞。

    中等:CRISPRi/a(C,G)除了产生功能CRISPRi/a细胞系外,还需要设计和克隆特定位点的RNA。

    中/长:CRISPR介导的缺失和加入多聚(A)信号(D和E)都需要筛选细胞(制造单细胞克隆),以确定那些成功的修饰。

    INcRNA研究思路

    下面的流程图为研究lncRNA提供了一个指南。

    • 不是全部数据库中的lncRNA都适用于开展研究。候选lncRNA的选择应考虑lncRNA的表达、种类和附近编码基因的变化。

    • lncRNAs的生物信息表征可以使用多种在线数据库完成

    • 表达验证:包括表达验证和确认lncRNA实际上是非蛋白编码

    • 功能验证涉及lncRNA调控基因表达,以及揭示转录物中对其功能重要的特定顺式元件。

    总结

    lncRNA已经被深入研究了几十年。当时我们还不知道这些RNA代表了基因组中产生的最大的RNA基因家族。RNA测序提供了对人类基因组前所未有的洞察,从而发现了大量的非编码RNA转录物。

    lncRNA的研究正以惊人的速度增长。通过查找已发布的RNA测序数据来选择lncRNA。此外,由于lncRNAs在表达模式上是细胞类型特异性的,单细胞测序技术的持续发展将不断优化和完善lncRNAs的数据库。

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