主要器材和试剂
实验材料 | 细胞样品 冰冻或新鲜组织 |
---|---|
试剂、试剂盒 | TRIzol试剂 氯仿 异丙醇 75%乙醇 DEPC H2O |
仪器、耗材 | 离心管 离心机 |
1 总RNA提取
- 样品处理:
- 培养细胞:收获细胞1-5×10^7,移入1.5ml离心管中,加入1ml Trizol,混匀,室温静置5min。
- 组织:取50-100mg组织(新鲜或-70℃及液氮中保存的组织均可)置1.5ml离心管中,加入1ml Trizol充分匀浆,室温静置5min。
- 加入0.2ml氯仿,振荡15s,静置2min。
- 4℃离心,12000g×15min,取上清。
- 加入0.5ml异丙醇,将管中液体轻轻混匀,室温静置10min。
- 4℃离心,12000g×10min,弃上清。
- 加入1ml 75%乙醇,轻轻洗涤沉淀。4℃,7500g×5min,弃上清。
- 点离,用小Tip吸干液体。气干沉淀5-10 min, DEPC处理水40μl加入,中枪打匀,55-60 ℃水浴10 min溶解总RNA,测OD值。
2.从总RNA中分离mRNA
1、取上述提取的总RNA若干(少于0.25 mg)到一个新的无RNase 的EP管中,用无RNase的水定容到250 μl。
2、加入Buffer OBB 250 μl, Oligotex Suspension 15 μl。用Tip打匀或用手弹匀。
3、70℃水浴,3 min(裂解RNA的二级结构)。
4、20-30℃条件下,静置10 min(让Oligotex与mRNA结合)。
5、高速离心2 min,小心吸走上清(该上清要保留),留下约50 μl的上清在原管里。
6、用Buffer OW2 400 μl重悬含Oligotex/mRNA复合物的沉淀,然后将这些加到套有1.5 ml EP管的SPIN柱子上,高速离心1 min。
7、将SPIN柱子移到一个新的EP管上,加Buffer OW2 400 μl到柱子,高速离心1 min,丢掉滤过液。
8、将SPIN柱子移到一个新的EP管上,加20-100 μl热的(70 ℃)Buffer OEB到柱子上,用Tip来回吸打3-4 次,高速离心1 min。
9、为保证最大的 mRNA产量,可再次重复第8步。
10、电泳。
注意事项
- 样品量和Trizol的加入量一定要按步骤(1)的比例,不能随意增加样品量或减少Trizol量,否则会使内源性RNase的抑制不完全,导致RNA降解。
- 实验过程必须严格防止RNsae的污染。
3. 样品cDNA合成
(PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser (Perfect Real Time)), Takara反应体系。
反转录反应:TB Green qPCR分析法,这里以takara为例。
1. 去除基因组DNA反应
按如下成分于冰上配制反应混合液,为了保证反应液配制的准确性,进行各项反应时,应先按反应数+2的量配制Master Mix,然后再分装到每个反应管中,最后加入RNA样品。
试剂 | 使用量 |
---|---|
5×gDNA Eraser Buffer | 2.0 μl |
gDNA Eraser | 1.0 μl |
Total RNA | *1 |
RNase Free dH2O | up to 10 μ |
↓
42℃ 2 min(或者室温5 min*2)
4℃
2. 反转录反应
反应液配制请在冰上进行。为了保证反应液配制的准确性,进行各项反应时,应先按反应数+2的量配制Master Mix,然后再分装10 μl到每个反应管中*3。轻柔混匀后立即进行反转录反应。
序号 | 试剂 | 使用量 |
---|---|---|
1 | 步骤1的反应液 | 10.0 μl |
2 | PrimeScript RT Enzyme Mix I | 1.0 μl |
3 | RT Primer Mix *4 | 1.0 μl |
4 | 5×PrimeScript Buffer 2(for Real Time) | 4.0 μl |
5 | RNase Free dH2O | 4.0 μl |
6 | Total | 20 μl *5 |
↓
37℃ 15 min6
85℃ 5 sec
4℃7
Master Mix(10 μl) = 2 + 3 + 4 + 5
附注:
*1: 20 μl反转录反应体系中,TB Green qPCR法最多可使用1 μg的Total RNA,探针qPCR分析法最多可使用2 μg的Total RNA。
*2: 室温反应时,可以延长至30分钟。
*3: 若不配制Master Mix,向步骤1的反应液中添加试剂时,要先加入RNase Free dd2O和5×PrimeScript Buffer 2 (for Real Time)混合均匀,以使gDNA Eraser的活性充分受到抑制, 再添加RT Primer Mix、PrimeScript RT Enzyme Mix I,轻轻混匀进行反转录反应。
*4: 使用RT Primer Mix可以高效合成cDNA。因为实验目的不同,也可以不使用RT Primer Mix,而选择Oligo dT Primer或Gene Specific Primer进行反转录反应,引物使用量如下:
- Oligo dT Primer 50 pmol/20 μl反应体系
- Gene Specific Primer 5 pmol/20 μl反应体系
*5: 反转录体系可以根据需要相应扩大。
*6: 使用Gene Specific Primer时,建议反转录反应条件设置为42℃ 15 min。PCR反应有非特异性扩增时,将温度升到50℃会有所改善。
*7: 合成的cDNA需要长期保存时,请于-20℃或更低温度保存。
注意:
- 在反转录反应中,TB Green qPCR法的RT Primer Mix 用量为1 μl,探针qPCR分析法的用量为4 μl。
- 得到的RT反应液加入到下一步的Real Time PCR反应体系中,其加入量不要超过Real Time PCR反应体积的1/10(V/V)量。
4. qPCR
【使用 Applied Biosystems 7300/7500/7500 Fast Real-Time PCR System 和 StepOnePlus Real-TimePCR System 时的操作方法】
※请按照各仪器的使用说明书进行操作。
1. 按下列组份配制 PCR 反应液(反应液配制请在冰上进行)。
1 反应体系
试剂 | 使用量 | 使用量 | 终浓度 |
---|---|---|---|
TB Green Fast qPCR Mix(2×) | 10 μl | 25 μl | 1× |
PCR Forward Primer(10 μM) | 0.8 μl | 2 μl | 0.4 μM |
PCR Reverse Primer(10 μM) | 0.8 μl | 2 μl | 0.4 μM |
ROX Ref. Dye or Dye II(50×) | 0.4 μl | 1 μl | 1× |
DNA 模板 | 2 μl | 4 μl | |
灭菌水 | 6 μl | 16 μl | |
Total | 20 μl | 50 μl |
*1:通常引物终浓度为 0.4 μM 可以得到较好结果。反应性能较差时,可以在 0.2~1.0 μM
范围内调整引物浓度。
*2:ROX Reference Dye II(50×)比 ROX Reference Dye(50×)浓度低,使用 Applied
Biosystems 7500 Real-Time PCR System 和 7500 Fast Real-Time PCR System
时,请使用 ROX Reference Dye II(50×)。
使用 StepOnePlus 和 7300 Real-Time PCR System 时,请使用 ROX Reference Dye
(50×)。
*3:模板添加量因模板溶液中存在的靶基因的拷贝数不同而不同,进行梯度稀释研讨适当的模板添加量。在 20 μl 反应体系中模板 DNA 添加量最好在 100 ng 以下。以 RT-PCR反应的 cDNA(RT 反应液)为模板时,添加量不要超过 PCR 反应液总体积的 10%
*4:按照各仪器推荐体系进行反应液配制。
2. 开始 Real Time PCR 反应。
建议采用下面的 Shuttle PCR 标准操作流程进行 PCR 反应。
首先尝试使用下面的操作流程,必要时进行 PCR 反应条件的优化。使用 Tm 值较低的引物等进行
Shuttle PCR 难以扩增时,进行三步法 PCR 扩增反应。优化 PCR 反应条件请参照「实验条件的选择方法」。
<Applied Biosystems 7300/7500 Real-Time PCR System、StepOnePlus>
Shuttle PCR 扩增标准操作流程:
Stage 1:预变性
Reps:1
95℃ 30 秒
|>>>>>>
Stage 2:PCR 反应
Reps:40
95℃ 5 秒
|>>>>>>>>>>>>>>
60℃ 10~15 秒*
|>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>|
Stage 3:Melt Curve
*:选择所使用的荧光通道(FAM、ROX),通过选择的荧光通道可以设定最短的检测时间。
StepOnePlus 可以设定为 10 秒。
<Applied Biosystems 7500 Fast Real-Time PCR System>
Shuttle PCR 扩增标准操作流程:
Holding Stage
Reps:1
95℃ 30 秒
|>>>>>
Cycling Stage
Number of Cycles:40
95℃ 3 秒
60℃ 12 秒~15 秒*
|>>>>>>>>>>>>
Melt Curve Stage
|>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>|
*:选择所使用的荧光通道(FAM、ROX),通过选择的荧光通道可以设定最短的检测时间
※使用注意:
本制品中使用的突变型 Taq HS 是利用抗 Taq 抗体抑制 DNA 聚合酶活性的 Hot Start PCR 酶。与其
他公司的化学修饰型 Hot Start 用 DNA 聚合酶相比,不需要 PCR 反应前的 95℃、5~15 分钟的酶的
活性化反应。如果高温处理时间过长,会使酶的活性下降,其 PCR 的扩增效率、定量准确度等都会受
到影响。如果在 PCR 反应前进行模板的预变性,通常设定为 95℃、30 秒。
3. 反应结束后确认 Real Time PCR 的扩增曲线和融解曲线,进行 PCR 定量时制作标准曲线。
分析方法参见 Real Time PCR 仪的使用说明书。
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