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RNA提取和逆转(Takara)和qPCR

RNA提取和逆转(Takara)和qPCR

作者: Stone_Stan4d | 来源:发表于2018-10-15 11:35 被阅读150次

    主要器材和试剂

    实验材料 细胞样品 冰冻或新鲜组织
    试剂、试剂盒 TRIzol试剂 氯仿 异丙醇 75%乙醇 DEPC H2O
    仪器、耗材 离心管 离心机

    1 总RNA提取

    1. 样品处理:
    • 培养细胞:收获细胞1-5×10^7,移入1.5ml离心管中,加入1ml Trizol,混匀,室温静置5min。
    • 组织:取50-100mg组织(新鲜或-70℃及液氮中保存的组织均可)置1.5ml离心管中,加入1ml Trizol充分匀浆,室温静置5min。
    1. 加入0.2ml氯仿,振荡15s,静置2min。
    2. 4℃离心,12000g×15min,取上清。
    3. 加入0.5ml异丙醇,将管中液体轻轻混匀,室温静置10min。
    4. 4℃离心,12000g×10min,弃上清。
    5. 加入1ml 75%乙醇,轻轻洗涤沉淀。4℃,7500g×5min,弃上清。
    6. 点离,用小Tip吸干液体。气干沉淀5-10 min, DEPC处理水40μl加入,中枪打匀,55-60 ℃水浴10 min溶解总RNA,测OD值。

    2.从总RNA中分离mRNA

    1、取上述提取的总RNA若干(少于0.25 mg)到一个新的无RNase 的EP管中,用无RNase的水定容到250 μl。
    2、加入Buffer OBB 250 μl, Oligotex Suspension 15 μl。用Tip打匀或用手弹匀。
    3、70℃水浴,3 min(裂解RNA的二级结构)。
    4、20-30℃条件下,静置10 min(让Oligotex与mRNA结合)。
    5、高速离心2 min,小心吸走上清(该上清要保留),留下约50 μl的上清在原管里。
    6、用Buffer OW2 400 μl重悬含Oligotex/mRNA复合物的沉淀,然后将这些加到套有1.5 ml EP管的SPIN柱子上,高速离心1 min。
    7、将SPIN柱子移到一个新的EP管上,加Buffer OW2 400 μl到柱子,高速离心1 min,丢掉滤过液。
    8、将SPIN柱子移到一个新的EP管上,加20-100 μl热的(70 ℃)Buffer OEB到柱子上,用Tip来回吸打3-4 次,高速离心1 min。
    9、为保证最大的 mRNA产量,可再次重复第8步。
    10、电泳。

    注意事项

    1. 样品量和Trizol的加入量一定要按步骤(1)的比例,不能随意增加样品量或减少Trizol量,否则会使内源性RNase的抑制不完全,导致RNA降解。
    2. 实验过程必须严格防止RNsae的污染。

    3. 样品cDNA合成

    (PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser (Perfect Real Time)), Takara反应体系

    反转录反应:TB Green qPCR分析法,这里以takara为例。

    1. 去除基因组DNA反应

    按如下成分于冰上配制反应混合液,为了保证反应液配制的准确性,进行各项反应时,应先按反应数+2的量配制Master Mix,然后再分装到每个反应管中,最后加入RNA样品。

    试剂 使用量
    5×gDNA Eraser Buffer 2.0 μl
    gDNA Eraser 1.0 μl
    Total RNA *1
    RNase Free dH2O up to 10 μ


    42℃ 2 min(或者室温5 min*2)
    4℃

    2. 反转录反应

    反应液配制请在冰上进行。为了保证反应液配制的准确性,进行各项反应时,应先按反应数+2的量配制Master Mix,然后再分装10 μl到每个反应管中*3。轻柔混匀后立即进行反转录反应。

    序号 试剂 使用量
    1 步骤1的反应液 10.0 μl
    2 PrimeScript RT Enzyme Mix I 1.0 μl
    3 RT Primer Mix *4 1.0 μl
    4 5×PrimeScript Buffer 2(for Real Time) 4.0 μl
    5 RNase Free dH2O 4.0 μl
    6 Total 20 μl *5


    37℃ 15 min6
    85℃ 5 sec
    4℃
    7

    Master Mix(10 μl) = 2 + 3 + 4 + 5

    附注:
    *1: 20 μl反转录反应体系中,TB Green qPCR法最多可使用1 μg的Total RNA,探针qPCR分析法最多可使用2 μg的Total RNA。
    *2: 室温反应时,可以延长至30分钟。
    *3: 若不配制Master Mix,向步骤1的反应液中添加试剂时,要先加入RNase Free dd2O和5×PrimeScript Buffer 2 (for Real Time)混合均匀,以使gDNA Eraser的活性充分受到抑制, 再添加RT Primer Mix、PrimeScript RT Enzyme Mix I,轻轻混匀进行反转录反应。
    *4: 使用RT Primer Mix可以高效合成cDNA。因为实验目的不同,也可以不使用RT Primer Mix,而选择Oligo dT Primer或Gene Specific Primer进行反转录反应,引物使用量如下:

    • Oligo dT Primer 50 pmol/20 μl反应体系
    • Gene Specific Primer 5 pmol/20 μl反应体系

    *5: 反转录体系可以根据需要相应扩大。
    *6: 使用Gene Specific Primer时,建议反转录反应条件设置为42℃ 15 min。PCR反应有非特异性扩增时,将温度升到50℃会有所改善。
    *7: 合成的cDNA需要长期保存时,请于-20℃或更低温度保存。

    注意:

    1. 在反转录反应中,TB Green qPCR法的RT Primer Mix 用量为1 μl,探针qPCR分析法的用量为4 μl。
    2. 得到的RT反应液加入到下一步的Real Time PCR反应体系中,其加入量不要超过Real Time PCR反应体积的1/10(V/V)量。

    4. qPCR

    【使用 Applied Biosystems 7300/7500/7500 Fast Real-Time PCR System 和 StepOnePlus Real-TimePCR System 时的操作方法】

    ※请按照各仪器的使用说明书进行操作。

    1. 按下列组份配制 PCR 反应液(反应液配制请在冰上进行)。

    1 反应体系

    试剂 使用量 使用量 终浓度
    TB Green Fast qPCR Mix(2×) 10 μl 25 μl
    PCR Forward Primer(10 μM) 0.8 μl 2 μl 0.4 μM^{*1}
    PCR Reverse Primer(10 μM) 0.8 μl 2 μl 0.4 μM^{*1}
    ROX Ref. Dye or Dye II(50×)^{*2} 0.4 μl 1 μl
    DNA 模板^{*3} 2 μl 4 μl
    灭菌水 6 μl 16 μl
    Total 20 μl^{*4} 50 μl^{*4}

    *1:通常引物终浓度为 0.4 μM 可以得到较好结果。反应性能较差时,可以在 0.2~1.0 μM
    范围内调整引物浓度。
    *2:ROX Reference Dye II(50×)比 ROX Reference Dye(50×)浓度低,使用 Applied
    Biosystems 7500 Real-Time PCR System 和 7500 Fast Real-Time PCR System
    时,请使用 ROX Reference Dye II(50×)。
    使用 StepOnePlus 和 7300 Real-Time PCR System 时,请使用 ROX Reference Dye
    (50×)。
    *3:模板添加量因模板溶液中存在的靶基因的拷贝数不同而不同,进行梯度稀释研讨适当的模板添加量。在 20 μl 反应体系中模板 DNA 添加量最好在 100 ng 以下。以 RT-PCR反应的 cDNA(RT 反应液)为模板时,添加量不要超过 PCR 反应液总体积的 10%
    *4:按照各仪器推荐体系进行反应液配制。

    2. 开始 Real Time PCR 反应。

    建议采用下面的 Shuttle PCR 标准操作流程进行 PCR 反应。
    首先尝试使用下面的操作流程,必要时进行 PCR 反应条件的优化。使用 Tm 值较低的引物等进行
    Shuttle PCR 难以扩增时,进行三步法 PCR 扩增反应。优化 PCR 反应条件请参照「实验条件的选择方法」。


    <Applied Biosystems 7300/7500 Real-Time PCR System、StepOnePlus>
    Shuttle PCR 扩增标准操作流程:


    Stage 1:预变性
    Reps:1
    95℃ 30 秒
    |>>>>>>
    Stage 2:PCR 反应
    Reps:40
    95℃ 5 秒
    |>>>>>>>>>>>>>>
    60℃ 10~15 秒*
    |>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>|
    Stage 3:Melt Curve

    *:选择所使用的荧光通道(FAM、ROX),通过选择的荧光通道可以设定最短的检测时间。
    StepOnePlus 可以设定为 10 秒。


    <Applied Biosystems 7500 Fast Real-Time PCR System>
    Shuttle PCR 扩增标准操作流程:


    Holding Stage
    Reps:1
    95℃ 30 秒
    |>>>>>
    Cycling Stage
    Number of Cycles:40
    95℃ 3 秒
    60℃ 12 秒~15 秒*
    |>>>>>>>>>>>>
    Melt Curve Stage
    |>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>|
    *:选择所使用的荧光通道(FAM、ROX),通过选择的荧光通道可以设定最短的检测时间

    ※使用注意:
    本制品中使用的突变型 Taq HS 是利用抗 Taq 抗体抑制 DNA 聚合酶活性的 Hot Start PCR 酶。与其
    他公司的化学修饰型 Hot Start 用 DNA 聚合酶相比,不需要 PCR 反应前的 95℃、5~15 分钟的酶的
    活性化反应。如果高温处理时间过长,会使酶的活性下降,其 PCR 的扩增效率、定量准确度等都会受
    到影响。如果在 PCR 反应前进行模板的预变性,通常设定为 95℃、30 秒。

    3. 反应结束后确认 Real Time PCR 的扩增曲线和融解曲线,进行 PCR 定量时制作标准曲线。

    分析方法参见 Real Time PCR 仪的使用说明书。

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