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使用Signac包进行单细胞ATAC-seq数据分析(二):Mo

使用Signac包进行单细胞ATAC-seq数据分析(二):Mo

作者: Davey1220 | 来源:发表于2020-04-29 08:14 被阅读0次

    在本教程中,我们将学习使用Signac包进行DNA序列的motif富集分析。Signac包可以使用两种互补的方法进行motif分析:一种是通过在一组差异可及性peaks中找到overrepresented的基序motifs,另一种是在不同细胞组之间执行差异基序活性(motif activity)分析的方法。

    安装并加载所需的R包

    if (!requireNamespace("BiocManager", quietly = TRUE))
        install.packages("BiocManager")
    BiocManager::install("JASPAR2018")
    BiocManager::install("TFBSTools")
    
    library(Signac)
    library(Seurat)
    library(JASPAR2018)
    library(TFBSTools)
    library(BSgenome.Mmusculus.UCSC.mm10)
    library(patchwork)
    set.seed(1234)
    

    加载所需的数据集

    mouse_brain <- readRDS("../vignette_data/adult_mouse_brain.rds")
    mouse_brain
    ## An object of class Seurat 
    ## 178653 features across 3503 samples within 2 assays 
    ## Active assay: peaks (157203 features, 157203 variable features)
    ##  1 other assay present: RNA
    ##  2 dimensional reductions calculated: lsi, umap
    
    p1 <- DimPlot(mouse_brain, label = TRUE, pt.size = 0.1) + NoLegend()
    p1
    
    image

    构建Motif类

    为了有助于Signac进行motif富集分析,我们需要创建一个Motif类来存储所有必需的信息,其中包括位置权重矩阵(PWM)或位置频率矩阵(PFM)的列表以及motif出现矩阵。在这里,我们构造了一个Motif对象,并将其添加到我们的小鼠大脑数据集中。可以使用AddMotifObject函数将motif对象添加到Seurat对象的assay中:

    # Get a list of motif position frequency matrices from the JASPAR database
    # 使用getMatrixSet函数从JASPAR数据库中提取Motif的PFM矩阵信息
    pfm <- getMatrixSet(
      x = JASPAR2018,
      opts = list(species = 9606, all_versions = FALSE)
    )
    
    # Scan the DNA sequence of each peak for the presence of each motif
    # 使用CreateMotifMatrix函数构建Motif矩阵对象
    motif.matrix <- CreateMotifMatrix(
      features = StringToGRanges(rownames(mouse_brain), sep = c(":", "-")),
      pwm = pfm,
      genome = 'mm10',
      sep = c(":", "-"),
      use.counts = FALSE
    )
    
    # Create a new Mofif object to store the results
    # 使用CreateMotifObject函数构建Motif对象
    motif <- CreateMotifObject(
      data = motif.matrix,
      pwm = pfm
    )
    
    # Add the Motif object to the assay
    # 使用AddMotifObject函数将Motif类添加到Seurat对象中
    mouse_brain[['peaks']] <- AddMotifObject(
      object = mouse_brain[['peaks']],
      motif.object = motif
    )
    

    为了找出overrepresented的motifs基序,我们还需要计算peaks的一些序列特征,例如GC含量,序列长度和二核苷酸频率。我们可以使用RegionStats函数计算这些信息,并将结果存储在Seurat对象的元数据中。

    # 使用RegionStats函数计算peaks区域的序列特生
    mouse_brain <- RegionStats(
      object = mouse_brain,
      genome = BSgenome.Mmusculus.UCSC.mm10,
      sep = c(":", "-")
    )
    

    Finding overrepresented motifs

    为了鉴定出潜在的重要细胞类型特异性调控序列,我们可以富集出在不同细胞类型之间差异可及性的peaks中overrepresented的DNA基序。
    这里,我们首先鉴定出Pvalb和Sst细胞类群之间的差异可及性peaks。然后,对它们进行一次超几何测试检验,以检验在给定频率下偶然观察到基序的可能性,并与GC含量匹配的背景峰进行比较。

    # 使用FindMarkers函数鉴定差异可及性peaks
    da_peaks <- FindMarkers(
      object = mouse_brain,
      ident.1 = 'Pvalb',
      ident.2 = 'Sst',
      only.pos = TRUE,
      test.use = 'LR',
      latent.vars = 'nCount_peaks'
    )
    
    # Test the differentially accessible peaks for overrepresented motifs
    # 使用FindMotifs函数进行motif富集分析
    enriched.motifs <- FindMotifs(
      object = mouse_brain,
      features = head(rownames(da_peaks), 1000)
    )
    
    # 查看motif富集分析的结果
    # sort by p-value and fold change
    enriched.motifs <- enriched.motifs[order(enriched.motifs[, 7], -enriched.motifs[, 6]), ]
    head(enriched.motifs)
    ##             motif observed background percent.observed percent.background
    ## MA0497.1 MA0497.1      431       9019             43.1            22.5475
    ## MA1151.1 MA1151.1      226       3227             22.6             8.0675
    ## MA0773.1 MA0773.1      304       5421             30.4            13.5525
    ## MA0072.1 MA0072.1      218       3160             21.8             7.9000
    ## MA0052.3 MA0052.3      315       5844             31.5            14.6100
    ## MA1150.1 MA1150.1      211       3108             21.1             7.7700
    ##          fold.enrichment       pvalue  motif.name
    ## MA0497.1        1.911520 1.549646e-48       MEF2C
    ## MA1151.1        2.801363 5.818264e-47        RORC
    ## MA0773.1        2.243129 1.365161e-44       MEF2D
    ## MA0072.1        2.759494 4.091607e-44 RORA(var.2)
    ## MA0052.3        2.156057 6.539737e-43       MEF2A
    ## MA1150.1        2.715573 1.600301e-41        RORB
    

    我们还可以使用MotifPlot函数绘制motif的位置权重矩阵,可视化不同的motif序列。

    MotifPlot(
      object = mouse_brain,
      motifs = head(rownames(enriched.motifs))
    )
    
    image

    Computing motif activities

    我们还可以通过运行chromVAR计算每个细胞的基序活性得分(motif activity score),这样我们可以查看每个细胞的motif activities,并且还提供了一种识别细胞类型之间差异激活的基序的替代方法。ChromVAR可识别与细胞之间染色质可及性变异相关的基序,有关该方法的完整说明,请参见chromVAR的说明文档

    # 使用RunChromVAR函数计算所有细胞中的motif activities
    mouse_brain <- RunChromVAR(
      object = mouse_brain,
      genome = BSgenome.Mmusculus.UCSC.mm10
    )
    
    DefaultAssay(mouse_brain) <- 'chromvar'
    
    # look at the activity of Mef2c, the top hit from the overrepresentation testing
    p2 <- FeaturePlot(
      object = mouse_brain,
      features = rownames(enriched.motifs)[[1]],
      min.cutoff = 'q10',
      max.cutoff = 'q90',
      pt.size = 0.1
    )
    p1 + p2
    
    image

    我们还可以直接测试不同细胞类型之间motif的差异活性得分,这和对不同细胞类型之间的差异可及性peaks进行富集测试的结果相类似。

    differential.activity <- FindMarkers(
      object = mouse_brain,
      ident.1 = 'Pvalb',
      ident.2 = 'Sst',
      only.pos = TRUE,
      test.use = 'LR',
      latent.vars = 'nCount_peaks'
    )
    
    # 使用MotifPlot函数对富集到的motif进行可视化
    MotifPlot(
      object = mouse_brain,
      motifs = head(rownames(differential.activity)),
      assay = 'peaks'
    )
    
    image

    参考来源:https://satijalab.org/signac/articles/motif_vignette.html

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