流式分选仪的发展趋势:检测通道与分选通道增加 & 自动化程度提升
分选型流式细胞仪的发展历程(参考BD)
分选型流式细胞仪与分析型相比增加了 分选系统,因此文内着重记录分选系统的原理和类型,以及细胞分选的应用领域,关于流式分析相关的介绍详细参考 流式之一 | 传统流式细胞术(分析型)
1. 流式细胞分选的原理
一台流式分选仪分为四大系统:(1)鞘液流和样本流构成的液流系统(2)激光器和滤光片构成的光学系统(3)信号检测器构成和呈现数据的电子系统(4)对特定细胞进行分选的分选系统
2. 流式分选的类型
2.1 捕获管分选
在封闭的液流管路上加装细胞分选系统,液流可分为三段:分析前区、细胞分析区和分析后区;在液流中安装一个可移动式捕捉管,捕捉管口可在“细胞分析区”和“分析后区”之间快速切换,捕捉管口处于“细胞分析区”时,可抓取欲分选细胞,捕捉管口处于“分析后区”,则不分选
- 优点:全封闭管路,有效防止污染
- 缺点:分选速度慢,且一次只能分选一种细胞
2.2 电荷式分选
在分选过程中,给予液流高频振荡(15-100kHz),使液流断裂为大小均匀的液滴,液滴在喷嘴下面与液流分离,瞬间加电,带正电荷或负电荷的液滴经过电场作用后会发生偏转,利用此原理就可以将感兴趣的细胞分选出来
- 优点:分选速度很快,且可同时分选出1-6种细胞
- 缺点:高压加电对细胞有微弱的损伤
注意:
drop delay的理解
drop delay:激光激发到液流断点的时间
如果需要分选单细胞到96孔板或384孔板,在仪器自动计算drop delay基础上需要再通过手工的方法精准矫正
3. 分选模式的选择
- 富集模式:通常用于分选低比例细胞,保证得到足够数量的目的细胞,但是纯度会降低
- 纯度模式:最常用的模式,一个液滴里只有目的细胞,且没有非目的细胞,而且离这个目的细胞前后一定范围(才可以设定)没有目标细胞,它才被分选
- 单细胞模式:目的细胞必须位于液滴中间位置,前后液滴没有其他细胞才会被分选,一般用于多孔板克隆分选
流式分选(其他细胞分离方法不能替代的情况):
- 目的细胞有极高的纯度要求(95%-100%)
- 分离低密度表面抗原的细胞(弱阳性细胞)
- 多色荧光标记来分选细胞
- 多孔板分选
- 极低含量的细胞分选(百万分之一)
- 根据表面受体密度差异来分离不同细胞
4. 细胞分选的应用领域
4.1 单细胞测序
流式细胞分选技术已是单细胞获取的主流技术:
- 高通量:短时间内分析大量细胞;高速分选,利于低比例细胞的快速富集
- 多参数:通过大小,颗粒度,内在或外在荧光染色,最大程度得获得单细胞的多维信息;将单个细胞的基因转录,蛋白表达和细胞功能三者有机结合,与上下游无缝衔接
- 操作可行性:技术成熟,流程适合进行标准化操作
流式分选仪获得的单细胞分选到384孔板进行CEL-seq,一次实验获得单个细胞的基因水平和蛋白水平的多重分析
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4.2 极低比例细胞(如CTC)
通过流式分选仪分选得到数量极低的CTC细胞,分置于384孔板可以分别用于下游的单细胞测序或qPCR检测
举例:BD CTC分析分选workflow
举例:食道癌病人PBMC中极低含量的CTC检测
举例:食道癌病人PBMC中极低含量的CTC检测
4.3 干细胞分选
目前,干细胞的研究几乎涉及生命科学和生物医药的所有领域,不仅在细胞治疗、基因治疗中显示出重要价值,还在基因功能分析、发育生物学研究、新药筛选等方面发挥重要作用。目前的研究热点聚焦于:
- 干细胞鉴定
- 筛选标志
- 诱导、分化机制
- 组织再生与修复
目前已经得到确认的适合FCM分析检测的肿瘤干细胞表面特异性标志物
依据细胞表面蛋白差异来分选细胞
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