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流式(骨髓) 2019.5.17

流式(骨髓) 2019.5.17

作者: Steven潘 | 来源:发表于2019-05-20 09:16 被阅读0次

    取骨髓细胞

    1. 实验准备
       1.1 器材   杀鼠板,手术器械,酒精喷壶;5cm dish;研钵;
                 15mL离心管(管壁做好标记),离心管架;1mL枪,蓝枪头;
       1.2 试剂   PBS
    
       1.3# 若细胞需要培养或分选,需在原代细胞间中操作
       * 实验前将小鼠和手术器械浸泡于酒精中
       * 其他器材喷酒精并紫外照射30min
    
    2. 取骨头
       2.1 脱颈处死小鼠
            注意点: 体表喷足酒精,尽量防止毛沾到组织上 
       2.2 暴露股骨、胫骨、髂骨
       2.3 掰取骨头
            技巧: 沿关节活动的反向用力
       2.4 剥离肌肉
       2.5 去除关节   
    
    3. 取骨髓细胞
       3.1 清洗骨头:在6cm dish中倒入PBS,洗去骨头表面的血液、肌肉细胞
       3.2 研磨骨头:在研钵中压碎骨头
            技巧:  借助研磨棒左右摆动来碾压骨头。
            注意点: 长骨的造血部位位于两端,应将其充分压碎,以便尽可能收集骨髓细胞。
       3.3 冲洗骨粉:3~4mL的PBS(视骨头的量而定)冲洗,收集细胞悬液至15mL离心管中;共重复两次
            注意点: 加入PBS后用移液枪冲洗数次,直到骨渣变白,其中不再有血细胞。
    
       3.4 离心1400rpm,5min,弃上清   
            注意点:配平用同一型号的离心管
            此时可收拾台面:
                将小鼠尸体封袋弃于冰箱,垫料倒垃圾桶,冲洗鼠笼并晾置;
                将用过的5cm dish丢弃;未使用的放回;
                将离心管架、PBS、枪、枪头放回,台面喷酒精后擦干净;
                将杀鼠板、研钵、手术器械洗净,杀鼠板晾置,研钵和手术器械放烘箱15min
       3.5 用1mLPBS重悬细胞
    

    染色

    1. 实验准备
        1.1 确定配色    
        CD3--FITC(T细胞)  B220--PC7(B细胞)    CD11b--PE(髓系) Gr-1--APC-A750(中性粒) DAPI--PB450(死细胞)
        由于CD3阳性细胞较少,可用CD11b--FITC调FITC的补偿
        1.2 器材  流式管(blank+单标+样品,做好标记); 
                 2ul枪,200ul枪,1000ul枪,白、黄、蓝枪头;
                 冰盒;孵育盒
        1.3  试剂 PBS;流式抗体;细胞悬液
    
    2. 加细胞悬液
        向每支流式管中加入50ul细胞悬液。
    
    3. 染单标管
        3.1 每管加入0.5ul抗体。
            注意点:加入抗体时枪头应伸入液面以下;吹匀但不要吹出气泡,不要吹到管壁上
                   抗体的量需要根据目的细胞量来决定,通常染色细胞数为收集细胞数的10倍。
                   一般需要先记录总数,再根据目的细胞群体数目比例的不同来圈门,然后来决定进行染色的细胞总数。
            技巧: 可以用枪头将溶液搅匀,并将流式管底部轻磕桌面以震荡均匀
    
    4. 染样品管
        4.1 制作 master mix:(20ul PBS + 每种抗体各0.5ul)*样品管数  在EP管中混合均匀
        4.2 向各样品管中加入20ul混合液。
    
    5. 避光孵育
        5.1 避光4℃孵育20min以上(30min)。
        5.2 每管加入1ml的PBS以终止反应。
        5.3 离心1400rpm,5min,弃上清。
            此时可以将抗体放回冰箱,并准备流式上机所需材料。
        5.4 每管加入250ul的PBS重悬。
    

    上机

    1. 实验准备
        1.1 器材  流式管架,400目滤膜,孵育盒,1000ul枪,2ul枪,蓝、白枪头
        1.2 试剂  DAPI,已染色的细胞悬液
        1.3 开机流程    dd水高速8分钟
        1.4 设置窗口    第一排放3个基本窗口+峰图   第二排放k个调补偿窗口
        注意点: 每支流式管上机前,先用400目滤膜过滤
    
    2. blank管调增益
        2.1 运行,调节增益,使FSC-SSC图中细胞位于合适位置
        2.2 记录,圈门,gate活细胞、单细胞,将第二排的窗口gate到其父门上
    
    3. 单标管调补偿
        3.1 下一个试管,重命名
        3.2 修改第二排窗口的纵坐标为所测单标管荧光
            横坐标为所测单标的窗口,纵坐标仍保持SSC
        3.3 运行,记录,调补偿
            补偿矩阵:纵坐标为所测单标荧光,横坐标为被补偿通道
            增大“单标-被补偿通道”值,使右偏的阳性群恢复竖直
    
    4. 样品管分析
        4.1 下一个试管,重命名,运行,记录
        注意点: 每支流式管上机前染DAPI 0.3~0.5ul (溶液体积的1/1000)
        4.2 新建DAPI-SSC图,gate阴性群,标为alive cells,将后面各图的父群修改为alive cells。
        4.2 修改第二排第一张图坐标为CD3--B220,分别gate单阳性群B cells和T cells
        4.3 修改第二排第二张图坐标为Gr1--CD11b,gate双阳性群Neu
        技巧:当表达量难以直接分群时,可以将峰图的横坐标改为对应的荧光,图形最低处即分界线
        4.4 在空白处右键,点击统计设置,显示每个gate中的细胞数、比例和荧光的中位数
    
    5. 下机
        5.1 清洗,follow软件指示(一般为清洗液2min,水4min)
        5.2 关闭仪器和电脑,登记
        5.3 收拾材料,将枪、枪头、滤膜、流式管架、孵育盒放回,弃离心管及细胞废液。    
    

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