前言
上一篇数据分析:数据预处理--标准化方法优劣了解(二)讲了两类常用标准化方法,但没涉及到如何处理缺失数据。更多知识分享请到 https://zouhua.top/。
标准化
全局校正(global adjustment)标准化是蛋白质组学中常用的方法之一,它将log化的intensity数据的中心转换成一个常数,这个常数可以是mean、median或者其它数学测量指标。比如Zscore就是将数据中心的mean转换成常数0,且standard variation为1的标准化方法。虽然不全局校正标准化能够有效校正样本间的差异,但不能处理如非线性的偏差。
Robust scatter plot smoothing 或 lowess regression是另一类标准化方法,limma包的voom函数就使用了该方法。通过线性回归的残差拟合曲线,然后计算每个feature对应的权重值,这作为标准化结果。
Missing value存在的理由
蛋白质组的质谱数据的特点是缺失值特别多,产生缺失值的原因有好多:
-
蛋白质确实以某个丰度值存在,但检测仪器没有检测出来或者错误检测;
-
蛋白质确实以某个丰度值存在,但该丰度值在检测仪的下限之下;
-
蛋白质没有存在。
处理的缺失值的策略有:
-
基于第1种情况,可用现有观测值补缺(若缺失率不高,忽略不计也是可以接受的);
-
第2, 3种情况补缺失值是需要谨慎的,可能补充的值是不合理的。
补缺值的方法
缺失值分类:
- missing completely at random (MCAR): 完全随机缺失,检测仪器缺陷等因素导致无法检测。可以通过先验概率分布补缺,比如log2转化的数据一般服从正态分布,可以通过观测值的正态分布的均值和方差imputing missing value。
- abundance-dependent missing values:丰度依赖缺失值,在一些样本内能检测到,但其他样本却不可以。截尾数据(censored data)是一个更复杂的问题,因为观测值不是一个很好的估算基础。下图使用最小观测值补充结尾数据。
缺失值到底是符合MCAR还是censored data呢,可以通过概率模型判断。可阅读文献A statistical framework for protein quantitation in bottom-up MS-based proteomics或Bayesian analysis of iTRAQ data with nonrandom missingness: identification of differentially expressed proteins。
R补缺实现
- 最近邻方法knn,该方法原理是计算离缺失值最近的k个变量的Euclidean metric欧几里得距离,然后用这k个变量的平均值average value作为缺失值的替代。
library(missForest)
library(impute)
library(dplyr)
iris.mis <- prodNA(iris, noNA = 0.1)
iris.mis.impute.fit <- impute.knn(t(iris.mis[, -5]), k = 10, rowmax = 0.5, colmax = 0.8, maxp = 1500, rng.seed=123)
iris.mis.impute <- t(iris.mis.impute.fit$data) %>% data.frame() %>% mutate(Species=iris.mis$Species)
summary(iris)
summary(iris.mis)
summary(iris.mis.impute)
**Notes: ** 从1st和3rd分位数能看出KNN的补缺效果还不错,但也看到Sepal.Length的最小值补缺前后差距较大。
- 其他方法参考Reference 2。
systemic information
sessionInfo()
R version 4.0.2 (2020-06-22)
Platform: x86_64-conda_cos6-linux-gnu (64-bit)
Running under: CentOS Linux 8 (Core)
Matrix products: default
BLAS/LAPACK: /disk/share/anaconda3/lib/libopenblasp-r0.3.10.so
locale:
[1] LC_CTYPE=en_US.UTF-8 LC_NUMERIC=C LC_TIME=en_US.UTF-8 LC_COLLATE=en_US.UTF-8
[5] LC_MONETARY=en_US.UTF-8 LC_MESSAGES=en_US.UTF-8 LC_PAPER=en_US.UTF-8 LC_NAME=C
[9] LC_ADDRESS=C LC_TELEPHONE=C LC_MEASUREMENT=en_US.UTF-8 LC_IDENTIFICATION=C
attached base packages:
[1] stats graphics grDevices utils datasets methods base
other attached packages:
[1] PTXQC_1.0.12 tibble_3.1.5 dplyr_1.0.7
loaded via a namespace (and not attached):
[1] tinytex_0.32 tidyselect_1.1.1 xfun_0.24 bslib_0.2.5.1 reshape2_1.4.4 purrr_0.3.4
[7] colorspace_2.0-2 vctrs_0.3.8 generics_0.1.0 viridisLite_0.4.0 htmltools_0.5.1.1 yaml_2.2.1
[13] utf8_1.2.1 rlang_0.4.11 jquerylib_0.1.4 pillar_1.6.4 glue_1.4.2 DBI_1.1.1
[19] gdtools_0.2.2 RColorBrewer_1.1-2 lifecycle_1.0.0 plyr_1.8.6 stringr_1.4.0 munsell_0.5.0
[25] gtable_0.3.0 rvest_0.3.6 kableExtra_1.3.4 evaluate_0.14 knitr_1.33 UpSetR_1.4.0
[31] fansi_0.5.0 Rcpp_1.0.7 scales_1.1.1 webshot_0.5.2 jsonlite_1.7.2 systemfonts_0.3.2
[37] gridExtra_2.3 ggplot2_3.3.5 digest_0.6.27 stringi_1.4.6 ade4_1.7-18 cowplot_1.1.0
[43] grid_4.0.2 tools_4.0.2 magrittr_2.0.1 sass_0.4.0 ggdendro_0.1.22 R6P_0.2.2
[49] seqinr_4.2-4 crayon_1.4.1 tidyr_1.1.4 pkgconfig_2.0.3 ellipsis_0.3.2 MASS_7.3-54
[55] data.table_1.14.0 xml2_1.3.2 assertthat_0.2.1 rmarkdown_2.9 svglite_1.2.3.2 httr_1.4.2
[61] rstudioapi_0.13 R6_2.5.0 compiler_4.0.2
Reference
-
Normalization and missing value imputation for label-free LC-MS analysis
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