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PART2 6mA-seq

PART2 6mA-seq

作者: 小qqq | 来源:发表于2022-07-06 22:35 被阅读0次

    1.比对

    用bowtie 比对

    #下载软件
    conda install -y  bowtie bowtie2
    #激活环境
    conda activate atac
    vim  bowi.sh
    head bowi.sh
    bowtie2 -x /public/home/genome/bowtie_index  -1 .fq.gz  -2 .fq.gz |anaconda2/envs/chipseq/bin/samtools sort -@ 8 -O bam -o /6mA/cutadaptor/input.bam
    bowtie2 -x /public/home/genome/bowtie_index  -1 .fq.gz  -2 .fq.gz |anaconda2/envs/chipseq/bin/samtools sort -@ 8 -O bam -o /6mA/cutadaptor/IP.bam
    

    选用sambamba对来去重复

    #sambamba去重复
    sambamba markdup -r input.bam input.sambamba.rmdup.bam
    sambamba markdup -r IP.bam IP.sambamba.rmdup.bam
    

    smarttool对比对结果排序提取可靠的结果

    #smarttool对比对结果排序
    samtools sort -O bam -@ 4 -o ./input.fraw.bam input.sambamba.rmdup.bam 
    samtools sort -O bam -@ 4 -o ./IP.fraw.bam IP.sambamba.rmdup.bam
    #smarttool提取可靠的比对结果
    samtools view -f 2 -q 30  -o input.fraw.q30.bam input.fraw.bam
    samtools view -f 2 -q 30  -o IP.fraw.q30.bam IP.fraw.bam
    

    指定目录下输出一下文件:

    blast.png

    2.macs2 calling peak

    macs2 callpeak -f  BAMPE  -c input.fraw.bam -t   IP.fraw.bam  -p 0.05 -g 380699722 -n  6mAIP --outdir  ./peak  --nomodel -B --SPMR
    #-t:实验组,IP的数据文件
    #c: 对照组
    #f:指定输入文件的格式,默认是自动检测输入数据是什么格式,支持bam,sam,bed等
    #g:有效基因组大小,由于基因组序列的重复性,基因组实际可以mapping的大小小于原始的基因组。
    #--outdir:输出结果的存储路径
    #--n:输出文件名的前缀
    #-B/--bdg:输出bedgraph格式的文件
    

    指定目录下输出一下文件:

    call peak.png

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