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Cancer cells enter dormancy afte

Cancer cells enter dormancy afte

作者: 冻春卷 | 来源:发表于2018-10-14 16:35 被阅读87次

    1. Background

    ​ 乳腺癌病人在初级治疗后数年常常会复发,而肿瘤得到缓解的这段时间, 被定义为肿瘤细胞的休眠。因此,肿瘤复发也可被定义为:残留的肿瘤耐药细胞在经过一定时间的休眠后增殖、恶化。那么肿瘤休眠的机制研究将对肿瘤治疗新方法的发现具有重要意义。由于肿瘤细胞的行为受到间质细胞的影响,因此本研究在3D共培养模型下研究间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)对乳腺癌细胞(breast cancer cells,BCCs)休眠行为的影响。

    ​ 主要发现如下:1. 3D hang drops培养状态下,MSCs可定向富集在BCCs周边;2. 3D共培养状态下,MSCs迫使BCCs聚集成球形;3. 球状聚集的BCCs将MSCs内在化(吃了)后进入休眠状态Σ(っ°Д°;)っ;3. 内在化MSCs帮助BCCs存活但抑制肿瘤发生(留得青山在,不怕没柴烧);4. 转录组学及分泌组学的结果显示,休眠后的BCCs具有转录组及分泌组学上的变化。

    2. Knowledge accumulation

    1. Cell cannibalism: Cannibalism is the term used to describe “Cell-Eat-Cell” phenomenon.

    3. Material and methods

    1. Breast Cancer Xenograft Model: Female NOD/SCID mice (NOD. CB17-Prkdcscid/J)

    2. Cell lines: Human cancer cell lines [MDA (triple-negative breast cancer), A549 (lung adenocarcinoma), PANC-1 (pancreatic carcinoma), and PC3 (prostate cancer)]

    3. 3D Hang drop cultures: picture from “3D High-Content Analysis of Spheroids”

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    4. Human MSC and DF Culture: 详见文章.

    5. Microarrays. HTA_2.0 microarrays (Affymetrix) were performed on MDA monolayer control cells, MDA cells cultured for 72 h in hanging drops, and MDA cells sorted (CD90-negative) from 72-h MDA/MSC 3D cocultures.

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    4. Results

    1. 3D共培养下,MSCs促进三阴性乳腺癌细胞MDA细胞聚集成球状后MSCs快速消失

      ​ 将GFP标记的MSCs与MDA细胞共培养,使用荧光显微镜和流式细胞仪检测GFP荧光变化,实验分组如下:(1)3D MDA;(2)3D MSC-GFP;(3)3D MDA: MSC-GFP (1:1)。结果显示,MDA与MSCs共培养后,可使得MDA聚集成团,且GFP荧光含量随着共培养时间延长而减少,72 h时GFP含量减少至7%(0 h为49%),提示MSCs细胞数量的急剧下降。

      ​ 除此之外,通过流式细胞仪检测MSCs特异性标记物CD90的表达,CD90表达也随着共培养时间的延长而减少(72 h CD90表达减少至3%),证实了MSCs在与MDA共培养后快速消失的结果。

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    2. 3D共培养情况下,MDA细胞会内在化MSCs(吃了).

      ​ MSCs用CTG标记(绿色),MDA用CTR标记(红色),1:1共培养后,用荧光显微镜及流式细胞仪检测荧光变化,从结果中可见,随着共培养时间的延长,CTR与CTR双染色在24与48 h时达到68-69 %,72 h后降低至24 h,而MSC-CTG不断减少。以上结果表明,MDA细胞将MSCs细胞内在化后,MSCs细胞消失。与此同时,通过流式细胞仪检测MSCs细胞特异性标记物CD90的表达后发现,CD90与CTG荧光变化趋势一致,进一步证实MDA细胞内在话MSCs的结果。其示意图如下:

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    1. **内在化MSCs对BCC细胞增殖和成瘤性的影响 **

      in vitro 使用流式细胞仪、EdU proliferation kit、显微镜观察及MTS实验检测MSCs内在化对BCC增殖的影响,用流式细胞仪检测细胞周期变化。结果发现,3D共培养下,BCC内在化MSCs细胞后,BCC细胞增殖减缓,且该减缓与细胞周期无关。以上结果表明,MSCs内在化并未通过细胞周期下调BCC细胞增殖能力。

      in vivo 小鼠成瘤实验,将实验分为四组:(A)MDA单细胞单独接种;(B)MDA单细胞与MSCs单细胞共接种;(C)3D球状MDA;(D)MSCs共培养后分离出来的3D球状MDA。按照以上分组接种至 NOD/SCID小鼠体内。记录小鼠肿瘤形成时间、成瘤个数、肿瘤体积和量。结果显示MDA内在化MSCs后肿瘤生长能力显著低于单细胞样MDA,且D组小鼠尽有3只小鼠可成瘤。结果示意图如下:

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    2. 内在化MSCs可使MDA细胞进入休眠状态(不老不死不生孩子)

      流式细胞分选技术分离共培养后的MDA细胞后,分别使用显微镜观察及MTS实验检测,不同营养条件下(1/10 % FBS)MDA细胞的增殖数量和增殖能力。同时使用流式细胞技术检测分选后MDA细胞周期变化及凋亡情况。结果表明,内在MSCs可降低MDA细胞增殖数量(不生孩子),可在不影响MDA细胞周期的情况下(不老),帮助MDA细胞抗凋亡度过营养缺乏的难关(不死)

    3. MSCs内在化对MDS细胞表型的影响

      Taken together, interactions between MDA cells and MSCs that result in cannibalization of the MSCs promote a unique cancer cell gene signature, highlighted by factors involved in inflammation, stress response, and dormancy.

    5. Conclusion and discussion

    conclusion: BCC可通过内在化MSCs进入休眠状态。内在化MSCs促使BCC聚集呈球状,且在不影响细胞周期的情况下,减少BCC细胞增殖并帮助BCC对抗营养压力及凋亡。

    discussion:由于休眠状态下肿瘤细胞的抗压能力提升,且细胞表型发生变化,普通化疗药物可能对于休眠状态肿瘤细胞失效,从而诱发耐药,这也可能是抑制血管形成类抗肿瘤药耐药的原因之一(因其可在营养极度缺乏情况下存活)。

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