一:慢病毒感染导致细胞状态变差的表现:
慢病毒感染后:
①细胞培养皿的皿底(不是细胞内)出现大量黑点,在排除支原体污染后,最可能的原因是细胞大量死亡后留下的细胞碎片;
②细胞形态变圆、变得透亮,这种情况下是触发了细胞的免疫反应,引起细胞凋亡;
③细胞变得瘦长,不再饱满;
④细胞长势变慢。
二:细胞状态变差的原因:
1.过表达了致死基因,或者敲低了细胞的关键基因,这种情况下可能导致感染了病毒的细胞无法进行长期培养和实验,因此可以构建可诱导表达的慢病毒载体。
2.病毒溶液中残留的杂质蛋白、内毒素等会对细胞造成一定的毒性,不同细胞对毒性的耐受力不同。如果所选择的目的细胞对慢病毒比较敏感,则可能出现细胞状态变差甚至死亡的现象。
①;②,可增加铺板细胞的融合率(可提高至70%),或调整感染时加入的病毒量;③。
三:慢病毒感染细胞注意要点:
1.细胞感染的时机:
保证感染前细胞的生长状态良好;
在对数期生长的细胞中加入病毒,①可在细胞贴壁后加入病毒液;②在细胞传代时(即细胞尚未贴壁时)加入病毒液。根据经验,第二种方法的效果更好。
2.病毒的用量:
①购买的慢病毒:一般都有测过病毒滴度,因此可以根据滴度计算MOI值,MOI代表了一个细胞可能被病毒颗粒感染的次数,对大多数细胞来说,MOI值为10-15时最佳,若病毒一次用量太高,容易造成细胞大量死亡或凋亡。可选择使用高纯度高滴度的慢病毒,并适当降低感染时使用的MOI值。
②对于自己构建载体后利用慢病毒系统包装形成的病毒,则需要用一个病毒梯度来选择最佳方案,既不能直接导致细胞凋亡,也不能表达倍数过低。
③根据细胞状态,可选择在感染4小时后换液,用新鲜的完全培养液继续培养观察
④若需要增加表达倍数,可以分批、分次感染。先感染48h,用载体对应的抗生素筛选48h;待细胞状态稳定后,再次加入病毒,重复感染步骤。
3.PCR验证及WB验证时间:
在最后一次感染后,再培养2代,方可收样进行验证。因为病毒感染对细胞来说,是一种stress,处于胁迫状态下的细胞状态会和正常细胞有所区别。在病毒感染的情况下,细胞免疫系统会被激活,因此,如果研究对象是免疫相关的基因,则受到的影响会更大。
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