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抗体偶联药物 (ADC)——抗肿瘤细胞 | MedChemExp

抗体偶联药物 (ADC)——抗肿瘤细胞 | MedChemExp

作者: MedChemExpress1 | 来源:发表于2022-06-27 09:39 被阅读0次

    Antibody-drug Conjugate (ADC)是一类结合了化学疗法和免疫疗法的高效药物。这个概念最早于100 多年前由德国科学家/医生 Paul Ehrlich 提出。ADC 由抗体 (Antibody)、细胞毒素分子 (ADC Cytotoxin, payload) 以及连接两者的连接子 (Linker) 组成。Paul Ehrlich 将 ADC 比喻成“魔法子弹”,因为它能在不伤害有机体 (毒副作用小) 的情况下特异性识别目标 (癌细胞)。ADC 毒素分子通过破坏 DNA、微管蛋白等从而阻止肿瘤细胞分裂,起到杀死细胞的作用。ADC 的精准靶向,彻底消除,简直媲美“狙击手”。

    一个成功的ADC分子,首先要保留单克隆抗体的选择性,同时能够释放足够高浓度的  payload,从而达到杀死肿瘤细胞的目的。我们先看下 ADC 发挥作用的步骤和机制。

    图1. ADC发挥作用的机制

    综上,在一个成功的ADC分子中,抗体的特异性、linker 的稳定性以及 payload 的高活性缺一不可。

    ADC的各组分是如何组装成完整“魔法子弹”的呢?

    抗体的连接位置集中在IgG1 和 IgG4 家族。最早发展起来的方法之一是位于 linker-payload 末端的亲电子基团 (比如马来酰亚胺或 N-hydroxysuccinimide (NHS) 片段),与抗体暴露的赖氨酸残基组装在一起。这种“随机”偶联方法会得到 ADC 的异质混合物。这样的混合物会对药代动力学、耐受性和疗效等产生负面影响。直到后来开发出的位点特异性偶联方法,大大减少了异质性。

    药物抗体比(Drug-to-antibody ratio, DAR) 是抗体偶联药物的平均数量,是 ADC 的一个重要属性。目前的偶联化学方法是赖氨酸侧链酰胺化或半胱氨酸链间二硫键还原,通常每个抗体的药物负载为 0~8 个药物 (D0~D8)。

    通过赖氨酸残基结合:虽然赖氨酸残基是有效的亲核基团,但是因为在整个抗体结构中分布着80~100个赖氨酸残基。所以作为最早开发的偶联方法,其选择性低。

    图2.赖氨酸残基结合的偶联过程

    通过硫醇基团偶联:一般来说,抗体不含游离硫醇,目前最常用的是人类IgG1抗体,有 4 个链间二硫键和 12 个链内二硫键,传统方法需要用 TCEP、DTT 或者 2-MEA 还原剂将 4 个链间二硫键氧还原打开,产生游离的硫醇,与 linker-payload 复合体中的亲电基团发生反应 (马来酰亚胺、NHS),产生不同 DAR 数和不同连接位点的 ADC 偶联异质混合物。

    图3.硫醇基团偶联过程

    位点特异性偶联(硫醇基团的特异性偶联):最著名的技术要数Genentech的 THIOMABTM技术了。THIOMABs利用基因工程技术在抗体特定位置插入带有半胱氨酸残基 (游离硫醇)。半胱氨酸残基与 payload 偶联,这种定点偶联方式,得到的 ADC 的 DAR 为 2。在体内实验显示出优越的安全性。

    图4.位点特异性偶联过程

    点击化学偶联:这种方法常常使用含叠氮化物的linker,将叠氮化物基团连接到 payload 结构的末端。叠氮化物可以与加入抗体的 DBCO 基团反应。其优点是反应非常高效和高产,条件温和。

    图5.点击化学偶联过程

    其它偶联形式:除了上述以外,还有其它基于醇(例如可以形成碳酸盐、醚和酯化合物) 和醛的偶联技术 (通过甲酰甘氨酸生成酶 (FGE) 偶联),通过工程氨基酰基——tRNA (aaRS)、氧化唾液酶和转氨试剂的偶联技术实现。

    那么如何检测ADC 的“好与坏”呢?

    药物抗体比(DAR):目前已经发展了很多测定DAR 的方案,包括全抗体质谱法、分光光度计测试法和各种色谱方法 (包括但不限于 HPLC、UV/VIS 紫外/可见光光谱分析)。

    ADC 中未结合毒素的测定:反相(RP)-HPLC 可用于根据外部标准曲线定量未缀合的有效载荷连接器的含量。

    疏水性预测:在新ADC 的发现和开发阶段,为了降低 ADC 的疏水性,尽可能降低有效毒素分子和连接子的分子量是至关重要的。在环结构和链中尽可能多的杂原子,以及尽可能多的亲水官能团作为取代基 (如-NH2、-OH/-COOH) 有助于优化亲水性。

    ADC 的体外效价随着 DAR 的增加而增加,但是 ADC 的血浆清除率也随着 DAR 的增加而增加,从而减少了药物暴露和体内生物效果。亲水性改善后的 ADC 明显具有优越的体内活性。亲水性改善后的ADC,血浆清除率降低,体内活性明显改善。

    ADC 发展中的挑战和机遇

    连接的不稳定性:这种不稳定性可导致payload 过早释放到血液中,并导致 ADC 的非特异性摄取和脱靶毒性。第一代的 ADC 具有酸可降解键 (如腙),其在偏中性 pH 的血浆中保持稳定,内化后在较低 pH 值的溶酶体中释放。但这种 linker (尤其是基于多肽的 linker) 会对血清蛋白酶敏感以及自发解偶联现象导致其在血浆中不稳定。和可降解 linker (SPP-DM1VcMMAE) 相比,不可降解的 linker (mcc-DM1 和 mcMMAF)

    具有更低的肝脏和血液毒性。因为其 payload 释放少,细胞毒性减小。但是不可降解 linker 不适用于所有靶点,毕竟需要单抗完全分解代谢才能释放 payload,另一方面,可降解 linker 导致 payload 的过早释放也可能通过“旁观者效应”发挥更好的疗效 (旁观者效应:活跃的 payload 也可能杀死周围的肿瘤细胞)。

    非特异性内吞作用:一般来说,IgG 抗体的净正电荷增加导致血浆清除率增加,组织分布增加。因此,优化 ADC 表面电荷,减少正常细胞中非靶向摄取,同时保留靶点肿瘤细胞摄取,有利于改善治疗指标 (TI)。疏水性会促进 ADC、尤其是高 DAR的ADC 的聚集和非特异性内吞,从而产生脱靶效应。高 DAR 的 ADC 本身也会被其它具有非特异性、内吞能力强的细胞清除,因此优化 DAR 也是改善 TI 的重要策略。

    受体介导的摄取机制:FcγRs介导的 ADC 脱靶毒性主要体现在血液毒性。血液毒性是含有 Auristatin (MAME, MMAF)、Calicheamicin和Maytansinoid (DM-1)的 ADC 最常见的脱靶剂量限制毒性 dose-limiting toxicities (DLTs)。

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    参考文献

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