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🤫 Seurat | 强烈建议收藏的单细胞分析标准流程(细胞周期

🤫 Seurat | 强烈建议收藏的单细胞分析标准流程(细胞周期

作者: 生信漫卷 | 来源:发表于2022-10-19 10:58 被阅读0次

    写在前面

    scRNAseq数据中,不同细胞处在不同细胞周期,如果不进行异质性校正的话,会对结果有很大的影响。🤨
    常用的方法是根据经典的细胞周期基因进行评分,即cell cycle scores, 然后在预处理时将score纳入回归中。👀

    用到的包

    rm(list = ls())
    library(Seurat)
    library(tidyverse)
    library(ggsci)
    

    示例数据

    exp.mat <- read.table(file = "./nestorawa_forcellcycle_expressionMatrix.txt", 
                          header = TRUE, as.is = TRUE, row.names = 1)
    

    Seurat标准流程处理

    4.1 创建Seurat对象

    marrow <- CreateSeuratObject(counts = exp.mat)
    marrow
    

    4.2 归一化(Normalization)

    marrow <- NormalizeData(marrow)
    

    4.3 寻找高变基因

    marrow <- FindVariableFeatures(marrow, selection.method = "vst")
    

    4.4 标准化

    marrow <- ScaleData(marrow, features = rownames(marrow))
    

    查看并提取细胞周期基因

    Seurat包内置了细胞周期的相关基因集,我们来看一下不同周期里的基因吧。🤒
    这里提供的是细胞周期的相关基因,如果你做的是小鼠,你需要做一下转换,解决方案如下:👇

    https://www.r-bloggers.com/2016/10/converting-mouse-to-human-gene-names-with-biomart-package/ (如果大家需要讲解的人,以后可以专门写一期这个方面的东西,欢迎留言。)

    5.1 查看细胞周期基因集

    Note! 这里演示我们用的是老版本,这里补充一下新版本cc.genes.updated.2019。 😘

    cc.genes
    

    5.2 提取细胞周期基因

    这里我们将不同周期的基因提取出来,即S期,G2期和M期。🥳

    s.genes <- cc.genes$s.genes
    g2m.genes <- cc.genes$g2m.genes
    

    主成分分析

    这里我们可以看到一些细胞周期基因PC8PC10是有显著差别的, 如TOP2AMKI67等。😉

    marrow <- RunPCA(marrow, features = VariableFeatures(marrow), 
                     ndims.print = 1:10, nfeatures.print = 10)
    
    DimHeatmap(marrow, dims = c(8, 10),
               fast = T)
    

    计算细胞周期评分

    7.1 计算评分

    现在我们可以根据这些细胞周期基因开始计算评分了。🤩

    marrow <- CellCycleScoring(marrow, 
                               s.features = s.genes, 
                               g2m.features = g2m.genes, 
                               set.ident = TRUE)
    
    head(marrow[[]])
    

    7.2 可视化-ridgeplot

    看一下几个细胞周期基因的分布情况。😘

    RidgePlot(marrow, 
              features = c("PCNA", "TOP2A", "MCM6", "MKI67"), 
              cols = pal_npg("nrc", alpha = 0.7)(3),
              ncol = 2)
    

    7.3 可视化-PCA

    我们用细胞周期基因做一下PCA,有明显的分别。🫠

    marrow <- RunPCA(marrow, features = c(s.genes, g2m.genes))
    DimPlot(marrow,
            cols = pal_npg("nrc", alpha = 0.7)(3))
    

    排除细胞周期异质性的影响

    计算好细胞周期的评分以后,我们就可以在标准化的时候加入这个变量了,去除它的影响。🤒

    8.1 开始去除

    marrow <- ScaleData(marrow, 
                        vars.to.regress = c("S.Score", "G2M.Score"), 
                        features = rownames(marrow))
    

    8.2 可视化-PCA

    这个时候我们再用细胞周期基因做一下PCA看看结果,成功在一起,没有明显的区分啦。

    marrow <- RunPCA(marrow, features = VariableFeatures(marrow), nfeatures.print = 10)
    marrow <- RunPCA(marrow, features = c(s.genes, g2m.genes))
    DimPlot(marrow,
            cols = pal_npg("nrc", alpha = 0.7)(3))
    

    可选步骤

    以上讲述的方法删除了所有与细胞周期相关的信号值。💪
    某些情况下,如分化过程中(如小鼠造血),干细胞处于静止状态,而分化细胞正处于增殖状态(反之亦然)。🧐
    在这种情况下,回归所有细胞周期效应,会影响干细胞祖细胞的区分。🫠
    所以,在这里我们采用G2M期S期得分之间的差值进行回归

    marrow$CC.Difference <- marrow$S.Score - marrow$G2M.Score
    marrow <- ScaleData(marrow, vars.to.regress = "CC.Difference", features = rownames(marrow))
    

    可视化一下吧!~🥰
    这里虽然细胞群在一起,但G1期G2M期/S期是可以区分开的。

    marrow <- RunPCA(marrow, features = VariableFeatures(marrow), nfeatures.print = 10)
    marrow <- RunPCA(marrow, features = c(s.genes, g2m.genes))
    DimPlot(marrow,
            cols = pal_npg("nrc", alpha = 0.7)(3))
    

    <img src="https://img.haomeiwen.com/i24475539/53b3ce362eeeccd8.png" alt="鲜肉" style="zoom:25%;" />

    <center>最后祝大家早日不卷!~</center>


    需要示例数据的小伙伴,在公众号回复Cellcycle获取吧!

    点个在看吧各位~ ✐.ɴɪᴄᴇ ᴅᴀʏ 〰

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