美文网首页单细胞测序单细胞测序专题集合单细胞测序
非负矩阵分解(NMF)应用于scRNAseq的细胞分群

非负矩阵分解(NMF)应用于scRNAseq的细胞分群

作者: Hayley笔记 | 来源:发表于2021-05-09 00:36 被阅读0次

    NMF算法简介

    非负矩阵分解(Non-negative Matrix Factorization, NMF)的思想可以描述为,对于任意给定的一个非负矩阵V,NMF算法能够找到一个非负矩阵W和一个非负矩阵H,使得非负矩阵V≈W*H 成立 ,从而将一个非负的矩阵分解为左右两个非负矩阵的乘积。

    利用矩阵分解来解决实际问题的分析方法很多,如PCA(主成分分析)、ICA(独立成分分析)、SVD(奇异值分解)等。在这些方法中,原始的大矩阵V被近似分解为低秩的V=WH形式。这些方法的共同特点是,即使输入的初始矩阵元素是全正的,传统的秩削减算法也不能保证原始数据的非负性,因子W和H中的元素往往含有负值元素。从数学和计算的观点看,分解结果中存在负值没有问题,但负值元素在实际问题中往往是没有意义的。NMF约束了原始矩阵V和分解矩阵W、H的非负性,这就意味着只能通过特征的相加来实现原始矩阵V的还原,最终导致的结果是:非负性会引发稀疏,非负性会使计算过程进入部分分解。

    非负矩阵分解在单细胞数据分析中的主要应用:
    1. 非负矩阵分解在做亚群细分和提取feature的时候是一个非常有效的工具。
    2. 多样本整合,LIGER中用的是非负矩阵分解
    3. CellChat做细胞通讯也用到了非负矩阵
    4. 空间转录组去卷积工具SPOTlight也用到了NMF

    使用NMF对scRNAseq的细胞进行分群操作

    1. 读取数据,重新构建Seurat对象,保存矩阵和metadata信息,去除降维信息

    ⚠️这里使用pbmc数据集来演示NMF做细胞分群,实际上NMF在对亚群细分提取feature时候效果更好,对亚群定义很有帮助。

    library(NMF)
    library(Seurat)
    pbmc <- readRDS("pbmc.rds")
    pbmc <- CreateSeuratObject(pbmc@assays$RNA@counts, 
                               meta.data = pbmc@meta.data)
    
    2. NMF

    重新进行标准化和归一化,注意设置do.center = F,这样就不会得到负值
    在做nmf时,rank值可以选的比目的预期的细胞类型/细胞状态稍微大一些的值,因为分解的一些因子会富集到线粒体核糖体等噪音,而不会落到一个具体的细胞亚群上面。(这里选了12)

    pbmc <- NormalizeData(pbmc) %>% FindVariableFeatures() %>% ScaleData(do.center = F) 
    vm <- pbmc@assays$RNA@scale.data
    saveRDS(vm, file = "pbmc_vm.rds")
    res <- nmf(vm, 12, method = "snmf/r")  #很慢
    save(res, file = "pbmc_nmf_res.rda")
    
    3. Extract cluster top loading features(提取分解得到的每个因子)

    ⚠️:被非负矩阵分解出来的一些marker基因,一般是很有生物学意义的基因(因此适合于亚群细分和提取feature,便于细胞亚群注释)

    # 每个因子提取30个
    fs <- extractFeatures(res, 30L)
    fs <- lapply(fs, function(x) rownames(res)[x])
    fs <- do.call("rbind", fs)
    rownames(fs) <- paste0("cluster", 1:12)
    write.csv(t(fs), "pb,c_NMF_TopGenes.csv")
    DT::datatable(t(fs))
    
    分解的每个因子所对应的topmarker。这些topmarker并不是FindMarker找出来的,但是和传统的降维聚类寻找marker的方法相比,NMF找出来的topmarker往往更具有生物学意义。
    4. 选择用于后续分析的因子,使用NMF运行的结果进行降维和聚类
    ### 选择用于后续分析的因子
    s.f <- 1:12   # 因子 1 主要是线粒体和核糖体
    
    ## 降维
    cell1 <- colnames(pbmc)
    cell2 <- colnames(coef(res))
    cells <- intersect(cell1, cell2)
    pbmc <- pbmc[,cells]
    pbmc <- RunPCA(pbmc, verbose = F)
    pbmc@reductions$nmf <- pbmc@reductions$pca
    pbmc@reductions$nmf@cell.embeddings <- t(coef(res)[,cells])    
    pbmc@reductions$nmf@feature.loadings <- basis(res)  
    pbmc <- RunUMAP(pbmc, reduction='nmf', dims=s.f)
    
    ## 基于NMF降维矩阵的聚类
    pbmc <- FindNeighbors(pbmc, reduction='nmf', dims=s.f) %>% FindClusters()
    
    ## 基于因子最大载荷分类
    pbmc$cluster <- apply(NMF::coefficients(res)[s.f,], 2, which.max)
    
    5. 降维聚类结果可视化
    p1 <- DimPlot(pbmc, label = T) + ggtitle("Clustered by Louvain")
    p2 <- DimPlot(pbmc, group.by = "cluster", label = T) + ggtitle("Clustered by max loading")
    pc <- p1|p2
    ggsave("pbmc_NMF_Cluster.pdf", pc, width = 10, height = 5)
    
    左图是Seurat的算法进行聚类的,右图是基于NMF重新降维聚类的结果,12个群是非负矩阵分出的12个因子(12是前面做nmf时,rank值定义的)
    FeaturePlot(pbmc, features = c("CD8A","CD8B","CD3D","CD4","GZMA","NKG7"), ncol = 3)
    
    saveRDS(pbmc, "pbmc_NMF.rds")
    

    注意:
    如果细胞数比较多,在做NMF时,用于做非负矩阵分解的高变基因选择6000个左右比较合适,没有必要用全部基因来做。(这里演示用了2000个)
    NMF运行很慢,在做大群定义结果和Seurat相差也不大,因此做大群定义的时候没有必要使用NMF。

    相关文章

      网友评论

        本文标题:非负矩阵分解(NMF)应用于scRNAseq的细胞分群

        本文链接:https://www.haomeiwen.com/subject/heqhdltx.html