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Autodock4(A4)和Autodock Vina(AV)区别
看下官方文件
两者都是Molecular Graphics Lab开发的,都可以通过AutoDock Tools(ADT)查看结果。
1 AV比A4预测的精确性更高
2 也可以ADT可视化操作。A4中需要的GPF,DPF,map文件不需要了(用A4必须有这些步骤)。
3 AV比A4操作简单
4 速度更快,时间更短。
5 可变的侧链。
However, the source code, the scoring funcion and the actual algorithms used are brand new, so it’s more correct to think of AutoDock Vina as a new “generation” rather than “version” of AutoDock.
所以,接下来用Autodock Vina开始对接
前面刚写了如何用PyMOL进行可视化
是用pdb中现有的受体配体,那如果是自己的蛋白和小分子配体文件呢(这里假设已经知道自己想做哪个哪个蛋白和分子)?那需要先做对接,得到最佳的匹配结构,然后再在PyMOL中进行可视化。
至于,究竟想做哪个蛋白或小分子?后面再来写,大概就是如何选取关键蛋白。
今天我们用EGFR作为受体,小分子配体是Osimertinib,还有一个未知的文件。
autodock不识别中文路径,所以一定要英文,下面步骤开始之前,先建立一个文件夹假如命为dockd。
并且在软件中设为默认目录
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/ba142e84258a791d.png)
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/6a8eb2fa103c8cae.png)
要想用Autodock vina做分子对接(本质就是生物化学中的锁匙学说),得现有让这个软件能识别的蛋白和配体文件。
1 受体蛋白和小分子配体的准备(pdb格式)
1.1 PDB格式蛋白文件的获取
还是在PDB下载。
search后出现以下界面
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/91297159b573a495.png)
要下载哪一个?一看结构很多相似。图中框起来的都是重要的筛选标签。
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/813f4434d83de789.png)
确定后结果如下
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/0dc5fbddc117ec64.png)
这里的1.07Å,Å是光波长度和分子直径的常用计量单位,值越小,分辨率越高,结构越准确。我们可以从页面里面看见一下基本信息,比如方法,物种以及被解析的时间等。还有配体的详细信息,比如SIMILES
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/986382561b04ad0a.png)
下载PDB格式文件到dockd文件夹。
导入PyMOL,把其中的水分子,其他配体全部删除。
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/900247453fd29abe.png)
然后export为新pdb文件
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/8d72223619f93723.png)
还可以结合unipro进行确认。
如果没有结构的蛋白那就要自己预测了。比如SWISS-MODEL
1.2 配体文件的获得
ADT不识别SDF文件,可以读入mol2或pdb格式文件。
A pubmed下载
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/dc132905dc27dd56.png)
PUBMED不提供pdb格式文件下载,有两种办法
第一,下载sdf格式,通过openBabel软件转换。
第二,复制SIMILES,进行在线转换
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/065c67bd142dbeb3.png)
提供下配体2的SIMILES
C1CC2=C(N=CN2C1)C@HN4CC5=C(C4=O)C=C(C=C5C(F)(F)F)C#CC6=CC=C(C=C6)CN7CCC(CC7)CO
现在为止,我们得到了蛋白和配体的识别的文件。
2 蛋白受体预处理
通过上面过程,受体和小分子的pdb格式都有了。接下来要进行蛋白受体预处理。比如去水,加氢,导出PDBQT为受体文件。
刚才去水已经用pymol软件处理了,ADT也提供这个功能。
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/c6a9c6c0ab998b35.png)
File-read molecule,选择刚才的py输出的蛋白文件
Delete water,hydrogens-add,ok
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/575bd280ad0f18ce.png)
保存为pdb文件
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/f62bced49a457e8b.png)
Grid-macromolecule-choose-select molecule,自动提示保存为pdbqt文件。
处理完了,就delete,方便处理其他小分子
3配体小分子的预处理
3.1 加氢
读入小分子文件
File-read molecule-mol2或pdb文件
在选择一个分子作为配体或受体之前,必须把所有的氢都加到这个分子上。所以这里我们打开小分子文件后,加氢这一步弹出的窗口默认就行
Edit-hydorgens-add
3.2 选为配体
Ligand-input-choose-选择-确定
接下来检测扭转键和中心,输出PDBQT格式的配体文件,
Ligand-torsion tree-detect root done
Ligand-output-save as PDBQT
到现在为止受体和配体的PDBQT文件都得到了。
4 Autodock Vina对接操作与对接结果解读
Grid-macromolecule-open-蛋白的pdbqt文件-打开-yes
导入小分子
Grid-set map types-open ligands-小分子pdbqt
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/c9824efe885fbefa.png)
4.1 设置对接box
Grid-grid box
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/a3f202792ab8caad.png)
通过拖曳,让盒子全部覆盖住受体
然后哪个角度都看不到盒子外的蛋白,就可以了
包裹住后,要把盒子里的小分子拖曳出来,步骤如下
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/4e56b3d83fb7d49a.png)
再重新把刚才的勾回去mouse那个框
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/b14fac547a91dd18.png)
File-close savingcurrent
Docking-output-vinaconfig
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/3a47f6dcdc7572b9.png)
工作目录多了一个文件txt
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/4e69521e4a07c22c.png)
打开看
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/3e4c49b42d3ce421.png)
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虚线框内的部分可以忽略,是Autodock4的部分内容。
注意:这里Autodock4有额外操作,便于PyMOL可视化的结果
首先,保证这两个文件在工作目录下
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/ed03c2092702b8ea.png)
设置好格子并保存后
输出gpf文件
grid-output-save GPF
然后run-run autogrid,会自动填充gpf文件,launch,会发现文件夹下多了很多文件
我们需要的是glg文件
后面会用
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5运行dockvina
Run—run autodock vina
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/619a8f0337d6b164.png)
Launch后需要等待
出现结果
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/16740d48f7ed7a40.png)
结果显示两个分子对接非常好,结合能都小于-5,
现在看个其他的对接结果,就能知道这个结果的好
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/967b1642b5c931c3.png)
出现了以下结果
![](https://img.haomeiwen.com/i7976641/ccc20eebe5de63cb.png)
可用txt打开
到此对接完成,可以删除所有
Edit-delete-delete all molecules
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