illumina 双端测序(pair end)
illumina测序的核心在于利用可逆终止的、荧光标记的dNTP进行边合成边测序(Sequencing-By-Synthesis,SBS)
Flowcell(流动池)是有着2个或8个lane(泳道)的玻璃板,每个lane可以测一个样本或者多样本的混合物,且随机布满了能够与文库两端接头分别互补配对或一致的寡核苷酸(oligos,P7和P5接头)。一个lane包含两列,每一列有60个tile,每个tile会种下不同的cluster,每个tile在一次循环中会拍照4次(每个碱基一次)。
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B站视频链接,讲的很详细:【陈巍学基因】视频1:Illumina测序化学原理_哔哩哔哩_bilibili
一、Library Preparation文库的构建
1. 利用转座子(transposome)对双链DNA进行剪切以及接头(adapter)的连接
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2. 接头连接成功后,利用低循环扩增技术在接头处进行修饰,分别在两端添加sequencing primer binding site1 / sequencing primer binding site2(即测序引物结合位点)、index1/index2以及我们称之P5和P7的寡核苷酸序列
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下图是维基百科的示意图,详细一些。
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注意:
- P5和P7是不同的,它们分别和flowcell上的接头互补和相同。为了方便阐述,将与P5互补的接头称为P5’,与P7互补的接头称为P7’。
- index1和index2也是不同的,与P5相连的是index2,与P7相连的是index1
关于index,也叫barcodes,因为一个lane可以同时测多个样品,为了避免混淆样品的read products,每种样品的DNA由一种index修饰,这样测序得到的reads都是具有index标记的,在测序结果中,依据之前标签与样品的对应关系,就可以获得对应样品的数据。而这里的index1和index2是为了区分paired-end测序得到的双端reads。
二、Cluster generation 簇生成
1. Flowcell上随机分布了两种不同的寡核苷酸序列,分别与P5互补(即P5’),与P7一致(即P7)。
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2. 待测sequence通过P5与folwcell上的P5’序列杂交互补,以待测sequence为模板进行互补链(即reverse strand)的延伸,互补链的两端为P5’和P7’。
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3. 接下来模板链被切断并洗下
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Reverse strand的P7’与Flowcell上的P7杂交互补,进行链的合成,这就是我们所熟知的桥式PCR
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接下来合成的双链被解链,再分别与Flowcell上的接头杂交互补,延伸,解链,杂交,延伸,解链...如此重复35个循环
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4. 桥式PCR完成后,使用NAOH将双链解链,并利用甲酰胺基嘧啶糖苷酶(Fpg)对8-氧鸟嘌呤糖苷(8-oxo-G)的选择性切断作用,选择性地将P5’与链的连接切断,留下与Flowcell上P7连接的链,也就是Forward strand。同时游离的3’端被阻断,防止不必要的DNA延伸
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三、测序
1. 测序引物(sequencing primer)结合到靠近P5的测序引物结合位点1(sequencing primer binding site 1)上,在系统中加入四种dNTP和DNA聚合酶。这里的dNTP有两个特点:它是有荧光基团标记的,每种碱基标记的荧光基团不一样;它的3’末端连了一个叠氮基,这个叠氮基能够阻断后面的碱基与它相连
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因此在聚合酶的作用下,与Forward strand相应位置碱基配对的dNTP就会结合到新合成的链上,而由于叠氮基的存在,后面的dNTP无法继续连接。这时用水将剩余的dNTP和酶给冲掉,将Flowcell进行扫描,扫描出来的荧光对应的碱基的配对碱基即是该链该位置的碱基。同时在这个Flowcell上有成千上万个cluster也在进行同样的反应,因此一个循环就能同时检测多个样本(这也是高通量的核心所在)。这个循环完成后,加入化学试剂把叠氮基和标记的荧光基团切掉,进行下一个循环(碱基的连接、检测与切除)。如此重复直至所有链的碱基序列被检测出,也就是Forward read 序列。
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2. Index测序:所有循环结束后,read products 被洗掉,index1 primer与链上index primer1 结合位点杂交配对,进行index1的合成及检测
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3. Index1测序完成后,洗脱测序产物。此时机器已通过荧光得到了index1的序列
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4.Index2测序:Forward strand顶端的P5序列与Flowcell上的P5’杂交配对,进行index2测序。测序完成后洗脱产物
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四、Paried-end sequencing(即对Reverse strand测序)
1. 洗脱index2测序产物后,以Flowcell上的P5’为引物,Forward strand为模板进行桥式扩增,得到双链
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2. NAOH使双链变性为单链,并洗去已经测序完成的Forward strand
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3. 类似的,readprimer2结合到靠近P7’的read primer binding site 2开始对Reverse strand的测序。测序完成后即可得到Reverse read序列。
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前面介绍的都是paired-end的测序,而single-end测序方式是只将index,sequencing primer binding site以及P7/P5添加到 fragamented DNA片段的一端,另一端直接连上P5/P7,将片段固定在Flowcell上桥式PCR生成DNA簇,然后单端测序读取序列
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