一、原理
逆转录-聚合酶链反应 (Reverse Transcription-Polymerase Chain
Reaction，RT-PCR)的原理是：提取组织或细胞中的总RNA，以其中的mRNA作为模板，采用Oligo（dT）或随机引物利用逆转录酶反转录成cDNA。再以cDNA为模板进行PCR扩增，而获得目的基因或检测基因表达。RT-PCR使RNA检测的灵敏性提高了几个数量级，使一些极为微量RNA样品分析成为可能。该技术主要用于：分析基因的转录产物、获取目的基因、合成cDNA探针、构建RNA高效转录系统。
二、实验材料
组织或细胞样品
三、试剂、试剂盒
RNA提取试剂
dNTP 混合物
Taq DNA聚合酶
第一链cDNA合成试剂盒
四、仪器、耗材
离心管
离心机
水浴锅
PCR管
电泳仪
凝胶图像分析系统
五、操作步骤
1.总RNA的提取：前面文章有做专门介绍，点击链接查看：Trizol法提取总RNA的流程
2.cDNA第一链的合成：
① 在0.5ml微量离心管中，加入总RNA 1-5μg，补充适量的DEPC H2O使总体积达11μl。在管中加10μM Oligo（dT）12-18 1μl，轻轻混匀、离心。
② 70℃加热10min，立即将微量离心管插入冰浴中至少1min。然后加入下列试剂的混合物：10×PCR buffer 2μl；25mM MgCl22μl；10mM dNTPmix 1μl；0.1M DTT 2μl。轻轻混匀，离心。42℃孵育2-5min。
③ 加入SuperscriptⅡ1μl ，在42℃水浴中孵育50min。
④ 于70℃加热15min以终止反应。
⑤ 将管插入冰中，加入RNase H 1μl ，37℃孵育20min，降解残留的RNA。-20℃保存备用。
3．PCR：
① 取0.5ml PCR管，依次加入下列试剂：第一链cDNA 2μl；上游引物（10pM） 2μl；下游引物（10pM） 2μl；dNTP(2mM) 4μl；10×PCR buffer 5μl；Taq 酶（2u/μl） 1μl。
② 加入适量的ddH2O，使总体积达50μl。轻轻混匀，离心。
③ 设定PCR程序。在适当的温度参数下扩增28-32个循环。为了保证实验结果的可靠与准确，可在PCR扩增目的基因时，加入一对内参（如G3PD）的特异性引物，同时扩增内参DNA，作为对照。
④ 电泳鉴定：行琼脂糖凝胶电泳，紫外灯下观察结果。
⑤ 密度扫描、结果分析：采用凝胶图像分析系统，对电泳条带进行密度扫描。
六、注意事项
在实验过程中要防止RNA的降解，保持RNA的完整性。在总RNA的提取过程中，注意避免mRNA的断裂。
为了防止非特异性扩增，必须设阴性对照。
内参的设定：主要为了用于靶RNA的定量。常用的内参有G3PD（甘油醛-3-磷酸脱氢酶）、β-Actin（β-肌动蛋白）等。其目的在于避免RNA定量误差、加样误差以及各PCR反应体系中扩增效率不均一各孔间的温度差等所造成的误差。
PCR不能进入平台期，出现平台效应与所扩增的目的基因的长度、序列、二级结构以及目标DNA起始的数量有关。故对于每一个目标序列出现平台效应的循环数，均应通过单独实验来确定。
防止DNA的污染：① 采用DNA酶处理RNA样品；② 在可能的情况下，将PCR引物置于基因的不同外显子，以消除基因和mRNA的共线性。
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