基因组质量评估 | LAI

转载自 LAI: 评估基因组质量一个标准

基因组组装完成之后，就需要对最后的质量进行评估。我们希望得到的contig文件中，每个contig都能足够的长，能够有一个完整的基因结构，归纳一下就是3C原则:

• 连续性(Contiguity): 得到的contig要足够的长
• 正确性(Correctness): 组装的contig错误率要低
• 完整性(Completeness)：尽可能包含整个原始序列

但是这三条原则其实是相互矛盾的，连续性越高，就意味着要处理更多的模糊节点，会导致整体错误率上升，为了保证完全的正确，那么就会导致contig非常的零碎。此外，这三条原则也比较定性，我们需要更加定量的数值衡量，目前比较常用的标准是N50和BUSCO/CEGMA。

最近有一篇文章"Assessing genome assembly quality using the LTR Assembly Index (LAI) "提出用长末端重复序列来评估基因组完整度，因为LTR比较难以组装，于是就用作评估结果的一个参数了。那问题来了，什么是LTR序列，LTR是在原病毒（整合的反转录病毒）两末的重复序列，结构见下图

image

上图中TSD表示target site duplications，红色三角表示LTR motif。A图是一个完整的LTR结构，其中a,b,c是LTR_retriever的分析目标。

LAI指数就是完整LTR反转座子序列占总LTR序列长度的比值。

其实作为一个农学出身，看到LAI，我脑海就想到了Leaf Area Index(叶面积指数)

本文以拟南芥的基因组为例来测试一下这个软件

一、软件安装

要想保证软件能够顺利的安装，需要先安装如下这几个软件, 好消息是这些软件都可以通过bioconda解决

makeblastdb, blastn, blastx
cd-hit-est
hmmserch
RepeatMasker

然后从GitHub上下载软件

cd ~/opt/biosoft
git clone https://github.com/oushujun/LTR_retriever.git

进入LTR_retriever文件下修改paths文件，提供每个软件所在的文件路径，下面是我的配置，你需要按照实际所在路径来设置

BLAST+=/home/xuzhougeng/opt/biosoft/ncbi-blast-2.7.1+/bin/
RepeatMasker=/home/xuzhougeng/opt/biosoft/RepeatMasker/
HMMER=/home/xuzhougeng/opt/anaconda2/envs/maker/bin/
CDHIT=/home/xuzhougeng/opt/anaconda2/envs/assembly/bin/

此外，你还需要安装GenomeTools或者LTR_FINDER，或者MGEScan_LTR才能提取出LTR序列，我这里下载的是LTR_FINDER

cd ~/opt/biosoft
git clone https://github.com/xzhub/LTR_Finder.git
cd LTR_Finder/source/
make

二、软件使用

第一步让我们用LTR_FINDER找到基因组的LTR序列

~/opt/biosoft/LTR_Finder/source/ltr_finder -D 20000 -d 1000 -L 700 -l 100 -p 20 -C -M 0.9 Athaliana.fa >Athaliana.finder.scn

• -D表示5'和3'LTR之间的最大距离；
• -d表示5'和3'LTR之间的最小距离；
• -L表示5'和3'LTR序列的最大长度；
• -l表示5'和3'LTR序列的最小长度；
• -p表示完全匹配配对的最小长度；
• -C表示检测中心粒(centriole)删除高度重复区域；
• -M表示最小的LTR相似度。
  如果不怎么该怎么设置就用默认值。

第二步运行LTR_retriever根据LTR_FINDER的输出识别LTR-RT，生成非冗余LTR-RT文库，可用于基因组注释

~/opt/biosoft/LTR_retriever/LTR_retriever -threads 4 -genome Athaliana.fa -infinder Athaliana.finder.scn

这里的-infinder表示输入来自于LTR_FINDER，它支持同时输入LTRharvest的输出(-inharvest)和 MGEScan-LTR 的输出(-inmgescan). 嫌速度太慢，可以用-threads增加线程数

这一步会调用RepeatMasker，而RepeatMasker要求序列ID长度不大于50个字符，所以请在第一步的时候请先对ID进行修改。

第三步计算LAI。如果前面找到LTR序列太少，低于5%，这一步程序就会报错，那么你就需要调整第一步参数，可能是太严格了。

/opt/biosoft/LTR_retriever/LAI -t 10 -genome Athaliana.fa -intact Athaliana.fa.pass.list -all Athaliana.fa.out

这里最后的结果文件为Athaliana.fa.out.LAI， 第二行就是总体信息，其中RAW_LAI是12.88， LAI是14.47

Chr From To Intact Total raw_LAI LAI
whole_genome 1 119667750 0.0079 0.0612 12.88 14.47

得到的LAI值按照如下评估标准进行分类：

Category	LAI	Examples
Draft	0 ≤ LAI < 10	Apple (v1.0), Cacao (v1.0)
Reference	10 ≤ LAI < 20	Arabidopsis (TAIR10), Grape (12X)
Gold	20 ≤ LAI	Rice (MSUv7), Maize (B73 v4)

和例子一样，TAIR10是中等水平。

参考文献：

• Ou S. and Jiang N. (2018). LTR_retriever: A Highly Accurate and Sensitive Program for Identification of Long Terminal Repeat Retrotransposons. Plant Physiol. 176(2): 1410-1422.
• Ou S., Chen J. and Jiang N. (2018). Assessing genome assembly quality using the LTR Assembly Index (LAI). Nucleic Acids Res. gky730: https://doi.org/10.1093/nar/gky730