前言
limma的全称是：Linear Models for Microarray Data
需要阅读limma的官方说明：https://www.bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/limma/inst/doc/usersguide.pdf
尤其是第8章 Linear Models Overview
常用知识点
知识点一 （文字解释）
进行差异分析时常用limma。虽然它是针对芯片数据开发的，但也有limma-voom可以分析转录组数据，可以作为金标准。
它需要的输入文件有：
-
表达矩阵 （exprSet）（这个容易获得），芯片数据可以通过
exprs()，常规的转录组可以通过read.csv()等导入 -
分组矩阵 (design) ：就是将表达矩阵的列（各个样本）分成几组（例如最简单的
case - control，或者一些时间序列的样本day0, day1, day2 ...）【通过model.matrix()得到】 -
比较矩阵（contrast）：意思就是如何指定函数去进行组间比较【通过
makeContrasts()得到】
它的主要流程有：
-
lmFit()：线性拟合模型构建【需要两个东西：
exprSet和design】 ，得到的结果再和contrast一起导入contrasts.fit()函数 -
eBayes()：利用上一步
contrasts.fit()的结果 -
topTable()：利用上一步
eBayes()的结果，并最终导出差异分析结果
知识点二（代码演示）
搭配上面👆的解释来看，效果更好
分开展示 =》 构建三个输入文件
# 输入文件一：例如我现在已经有了一个表达矩阵eset
# 输入文件二：分组矩阵【假设9个样本分成了3组】
design <- model.matrix(~ 0+factor(c(1,1,1,2,2,3,3,3)))
colnames(design) <- c("group1", "group2", "group3")
rownames(design) <- colnames(eset)
# 输入文件三：比较矩阵【如果要进行三组之间的两两比较】
contrast.matrix <- makeContrasts(group2-group1, group3-group2, group3-group1, levels=design)
- 注意一个问题：样本数量和分组数量不一样，因为即使有100个样本，最后还可能依然分成2组（处理和对照组，我们只关心分组）
- 比较矩阵的组之间用
-连接
分开展示 =》 进行三个主要流程
# 第一步：lmFit
fit <- lmFit(eset, design)
fit2 <- contrasts.fit(fit, contrast.matrix)
# 第二步：eBayes
fit2 <- eBayes(fit2)
# 第三步：topTable【最后例如要挑出第一个比较组：group2-group1的差异分析结果】
topTable(fit2, coef=1, adjust="BH")
-
使用
coef参数，这里设为1，也就是表示👆根据上面makeContrasts的第一个（group2-group1）来提取结果 -
adjust="BH"表示对p值的校正方法，包括了："none","BH","BY"and"holm"。那么为啥要对P值进行校正呢？
p值是针对单次检验，假设采用的p值为小于0.05，我们通常认为这个基因在两组样本中的表达是有显著差异的，但是仍旧有5%的概率表示这个基因并不是差异基因。但是，当两组样本中有20000个基因采用同样的检验方式进行统计检验时，就会遇到一个问题：单次犯错的概率为0.05， 如果进行20000次检验，那么就会有0.05*20000=1000 个基因在组间的差异被错误估计
最后整合展示代码
# 还是假设有了表达矩阵eset
design <- model.matrix(~ 0+factor(c(1,1,1,2,2,3,3,3)))
colnames(design) <- c("group1", "group2", "group3")
fit <- lmFit(eset, design)
contrast.matrix <- makeContrasts(group2-group1, group3-group2, group3-group1, levels=design)
fit2 <- contrasts.fit(fit, contrast.matrix)
fit2 <- eBayes(fit2)
# 【例如要挑出第一个比较组：group2-group1的差异分析结果】
output <- topTable(fit2, coef=1, adjust="BH")
最后的最后，别忘了去掉那些NA值
limma_DEG = na.omit(output)
# 然后可以选择保存
# write.csv(limma_DEG,"limma_results.csv",quote = F)
知识点三 一定要使用比较矩阵吗？
答案是不一定
看这里：https://github.com/bioconductor-china/basic/blob/master/makeContrasts.md
然后可以再结合说明书Chapter9.2 (第42页)
Group <- factor(targets$Target, levels=c("WT","Mu"))
-
如果使用：
design <- model.matrix(~Group) colnames(design) <- c("WT","MUvsWT")那么它已经把要比较的组放在了第一列，然后其余的列都与第一列进行比较，而结果使用
coef进行指定提取 -
或者可以用
design <- model.matrix(~0+Group) colnames(design) <- c("WT","MU")它没有设置默认如何比较，仅仅是做了一个分组，后续还需要使用
makeContrasts来定义
其实差异分析，一个使用难点就是：分组
limma包关于如何针对特殊情况进行分组描述了很大的篇幅
例如 如果包含多个组多个处理
参考：limma说明书 P43
-
实验设计背景
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有6个样本，分成3组（1、2、3），并且每组包括两个处理方式：一个对照（C），一个处理（T）
-
我们自己来构建这样一个数据
targets <- data.frame(FileName=paste0("File",1:6), SibShip=c(1,1,2,2,3,3), Treatment=rep(c("C","T"),3)) -
分组矩阵这样设计
library(limma) > (SibShip <- factor(targets$SibShip)) [1] 1 1 2 2 3 3 Levels: 1 2 3 > (Treat <- factor(targets$Treatment, levels=c("C","T"))) [1] C T C T C T Levels: C T # 注意这种设计方式： design <- model.matrix(~SibShip+Treat) -
最后还是三步走
fit <- lmFit(eset, design) fit <- eBayes(fit) topTable(fit, coef="TreatT")
上面分组矩阵的设计规律就是：
design <- model.matrix(~Block+Treatment)
将每个组作为一个block，其中只比较组内的处理和对照（Treatment）
例如 时间顺序的样本
参考P47 的 Chapter 9.6
比方说，有两种基因型（wt、mu），各自测了3个时间点（0、6、24h）
image
可以这样操作：
lev <- c("wt.0hr","wt.6hr","wt.24hr","mu.0hr","mu.6hr","mu.24hr")
f <- factor(Target, levels=lev)
design <- model.matrix(~0+f)
colnames(design) <- lev
fit <- lmFit(eset, design)
如果要探索野生型中从0到6、从6到24h等待后发生了什么变化
cont.wt <- makeContrasts(
"wt.6hr-wt.0hr",
"wt.24hr-wt.6hr", levels=design)
fit2 <- contrasts.fit(fit, cont.wt)
fit2 <- eBayes(fit2)
topTableF(fit2, adjust="BH")
# 那么对于mu型也是一样的
如果要探索从0-6、从6到24h处理后，mu相对wt发生了什么变化
cont.dif <- makeContrasts(
Dif6hr =(mu.6hr-mu.0hr)-(wt.6hr-wt.0hr),
Dif24hr=(mu.24hr-mu.6hr)-(wt.24hr-wt.6hr),
levels=design)
fit3 <- contrasts.fit(fit, cont.dif)
fit3 <- eBayes(fit3)
topTableF(fit3, adjust="BH")
当然，还有很多很多的例子，都在说明书有体现。
这里只是列出来一个思路：凡是想用一个包，它的帮助文档就是最好的答案
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