R实战 | NGS数据时间序列分析(maSigPro)
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一个答疑教程。
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22
示例数据
#BiocManager::install('maSigPro')
library(maSigPro)
# 载入示例数据
data(data.abiotic)
data.abiotic[1:5,1:5]
data(edesign.abiotic)
head(edesign.abiotic)
> data.abiotic[1:5,1:5]
Control_3H_1 Control_3H_2 Control_3H_3 Control_9H_1 Control_9H_2
STMDF90 0.13735714 -0.3653065 -0.15329448 0.44754535 0.287476796
STMCJ24 NA NA NA NA NA
STMJH42 0.07864449 0.1002328 -0.17365488 -0.25279484 0.184855409
STMDE66 0.22976991 0.4740975 0.46930716 0.37101059 -0.004992029
STMIX74 0.14407618 -0.4801864 -0.07847999 0.05692331 0.013045420
> head(edesign.abiotic)
Time Replicate Control Cold Heat Salt
Control_3H_1 3 1 1 0 0 0
Control_3H_2 3 1 1 0 0 0
Control_3H_3 3 1 1 0 0 0
Control_9H_1 9 2 1 0 0 0
Control_9H_2 9 2 1 0 0 0
Control_9H_3 9 2 1 0 0 0
注意:data.abiotic
是已经标准化过的基因表达矩阵。
建立回归模型
生成回归矩阵(makeDesignMatrix)
design <- make.design.matrix(edesign.abiotic, degree = 2)
design$groups.vector
示例数据有三个时间的,故考虑二次回归模型(degree = 2
)。
> design$groups.vector
[1] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl" "Control"
[5] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl" "Control"
[9] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl"
寻找重要基因(p.vector)
F检验确定回归方程的显著性,采用BH
的校正方式,校正多重假设检验的p值。
校正后的p
值小于p.vector
的参数Q
的基因就作为候选基因,进行下一步的分析。通过fit$SELEC
可以得到候选基因的表达量信息。
fit <- p.vector(data.abiotic, # 标准化的表达矩阵
design, # 实验设计的矩阵 make.design.matrix 生成
Q = 0.05, # 显著性水平
MT.adjust = "BH",
min.obs = 20
# 最低表达样本数 不应小于(degree+1)xGroups+1
)
fit$i # 显著性基因的数量
fit$SELEC # 显著性基因表达矩阵
寻找显著性差异(T.fit)
上述的回归方程是基于所有的自变量的组合构建的,接下来就是通过逐步回归法确定最佳的自变量组合。
tstep <- T.fit(fit, # p.vector结果
step.method = "backward",
alfa = 0.05) # 在逐步回归中用于变量选择的显著性水平
在挑选最佳的自变量组合时,通过每种自变量组合对应的回归模型的拟合优度值R-squared
来进行判断,R-squared
取值范围为0到1,数值越大,越接近1,回归模型的效果越好。
获取显著性基因列表(get.siggenes)
sigs <- get.siggenes(tstep, # T.fit结果
rsq = 0.6, # 逐步回归中的R-squared截至值
vars = "groups")
# vars参数有3种
# all 每个基因直接给出一个最佳的回归模型
# groups 只给出不同实验条件下相比control组中的差异基因
# each 会给出时间点和实验条件的所有组合对应差异基因列表
names(sigs)
names(sigs$sig.genes$ColdvsControl)
sigs$sig.genes$ColdvsControl$sig.profiles # 查看cold vs control的结果
结果可视化
韦恩图(suma2Venn)
suma2Venn(sigs$summary[, c(2:4)]) # 左图
suma2Venn(sigs$summary[, c(1:4)]) # 右图
# 这个韦恩图面积大小与数量不成比例 较普通
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see.genes()
see.genes(sigs$sig.genes$ColdvsControl, # 差异基因表达矩阵
show.fit = T, # 是否显示回归拟合线(虚线)
dis =design$dis, # 回归设计矩阵
cluster.method="hclust" , # 聚类方法
cluster.data = 1,
k = 9) # 聚类数目
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这一步生成两个图,如图可分别查看。注意调整图片显示区域大小,以免报错。
[图片上传失败...(image-d192c2-1653975368931)]
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PlotGroups()
选择某一特定genes
的表达进行可视化。
# 选取STMDE66基因
STMDE66 <- data.abiotic[rownames(data.abiotic)=="STMDE66", ]
PlotGroups (STMDE66,
edesign = edesign.abiotic)
[图片上传失败...(image-ba61b6-1653975368931)]
# 添加回归拟合线
PlotGroups (STMDE66,
edesign = edesign.abiotic,
show.fit = T,
dis = design$dis,
groups.vector = design$groups.vector)
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示例数据和代码领取
详见:https://mp.weixin.qq.com/s/MFdPrXrD_gErao-Jtsu6Fg
参考
Bioconductor - maSigPro(https://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/maSigPro.html)
往期内容
- (免费教程+代码领取)|跟着Cell学作图系列合集
- Q&A | 如何在论文中画出漂亮的插图?
- Front Immunol 复现 | 4. 使用estimate包评估肿瘤纯度
- R绘图 | 气泡散点图+拟合曲线
- 跟着 Cell 学作图 | 桑葚图(ggalluvial)
- R绘图 | 对比条形图+连线
- R绘图 | 一幅小提琴图的美化之旅
- R实战 | 给聚类加个圈圈(ggunchull)
- R绘图 | 描述性统计常用图(散点图+柱状图+饼图)
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一个答疑教程。
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示例数据
#BiocManager::install('maSigPro')
library(maSigPro)
# 载入示例数据
data(data.abiotic)
data.abiotic[1:5,1:5]
data(edesign.abiotic)
head(edesign.abiotic)
> data.abiotic[1:5,1:5]
Control_3H_1 Control_3H_2 Control_3H_3 Control_9H_1 Control_9H_2
STMDF90 0.13735714 -0.3653065 -0.15329448 0.44754535 0.287476796
STMCJ24 NA NA NA NA NA
STMJH42 0.07864449 0.1002328 -0.17365488 -0.25279484 0.184855409
STMDE66 0.22976991 0.4740975 0.46930716 0.37101059 -0.004992029
STMIX74 0.14407618 -0.4801864 -0.07847999 0.05692331 0.013045420
> head(edesign.abiotic)
Time Replicate Control Cold Heat Salt
Control_3H_1 3 1 1 0 0 0
Control_3H_2 3 1 1 0 0 0
Control_3H_3 3 1 1 0 0 0
Control_9H_1 9 2 1 0 0 0
Control_9H_2 9 2 1 0 0 0
Control_9H_3 9 2 1 0 0 0
注意:data.abiotic
是已经标准化过的基因表达矩阵。
建立回归模型
生成回归矩阵(makeDesignMatrix)
design <- make.design.matrix(edesign.abiotic, degree = 2)
design$groups.vector
示例数据有三个时间的,故考虑二次回归模型(degree = 2
)。
> design$groups.vector
[1] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl" "Control"
[5] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl" "Control"
[9] "ColdvsControl" "HeatvsControl" "SaltvsControl"
寻找重要基因(p.vector)
F检验确定回归方程的显著性,采用BH
的校正方式,校正多重假设检验的p值。
校正后的p
值小于p.vector
的参数Q
的基因就作为候选基因,进行下一步的分析。通过fit$SELEC
可以得到候选基因的表达量信息。
fit <- p.vector(data.abiotic, # 标准化的表达矩阵
design, # 实验设计的矩阵 make.design.matrix 生成
Q = 0.05, # 显著性水平
MT.adjust = "BH",
min.obs = 20
# 最低表达样本数 不应小于(degree+1)xGroups+1
)
fit$i # 显著性基因的数量
fit$SELEC # 显著性基因表达矩阵
寻找显著性差异(T.fit)
上述的回归方程是基于所有的自变量的组合构建的,接下来就是通过逐步回归法确定最佳的自变量组合。
tstep <- T.fit(fit, # p.vector结果
step.method = "backward",
alfa = 0.05) # 在逐步回归中用于变量选择的显著性水平
在挑选最佳的自变量组合时,通过每种自变量组合对应的回归模型的拟合优度值R-squared
来进行判断,R-squared
取值范围为0到1,数值越大,越接近1,回归模型的效果越好。
获取显著性基因列表(get.siggenes)
sigs <- get.siggenes(tstep, # T.fit结果
rsq = 0.6, # 逐步回归中的R-squared截至值
vars = "groups")
# vars参数有3种
# all 每个基因直接给出一个最佳的回归模型
# groups 只给出不同实验条件下相比control组中的差异基因
# each 会给出时间点和实验条件的所有组合对应差异基因列表
names(sigs)
names(sigs$sig.genes$ColdvsControl)
sigs$sig.genes$ColdvsControl$sig.profiles # 查看cold vs control的结果
结果可视化
韦恩图(suma2Venn)
suma2Venn(sigs$summary[, c(2:4)]) # 左图
suma2Venn(sigs$summary[, c(1:4)]) # 右图
# 这个韦恩图面积大小与数量不成比例 较普通
[图片上传失败...(image-70965a-1653975368931)]
see.genes()
see.genes(sigs$sig.genes$ColdvsControl, # 差异基因表达矩阵
show.fit = T, # 是否显示回归拟合线(虚线)
dis =design$dis, # 回归设计矩阵
cluster.method="hclust" , # 聚类方法
cluster.data = 1,
k = 9) # 聚类数目
[图片上传失败...(image-a2527d-1653975368931)]
这一步生成两个图,如图可分别查看。注意调整图片显示区域大小,以免报错。
[图片上传失败...(image-a09102-1653975368931)]
[图片上传失败...(image-a4c051-1653975368931)]
PlotGroups()
选择某一特定genes
的表达进行可视化。
# 选取STMDE66基因
STMDE66 <- data.abiotic[rownames(data.abiotic)=="STMDE66", ]
PlotGroups (STMDE66,
edesign = edesign.abiotic)
[图片上传失败...(image-1045d2-1653975368931)]
# 添加回归拟合线
PlotGroups (STMDE66,
edesign = edesign.abiotic,
show.fit = T,
dis = design$dis,
groups.vector = design$groups.vector)
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参考
Bioconductor - maSigPro(https://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/maSigPro.html)
往期内容
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- R绘图 | 描述性统计常用图(散点图+柱状图+饼图)
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