原文:Automatic classification of cellular expression by nonlinear stochastic embedding (ACCENSE)
作者:Karthik Shekhar, Petter Brodin, Mark M.Davis and Arup K.Chakraborty.
来源:Proceedings of the National Academy of Sciences (PNAS), 2014, 111(1): 202-207.
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摘要
质谱流式细胞技术 (Mass cytometry) 能够在单细胞水平上测试近 40 种不同的蛋白质,即提供前所未有的多维信息水平。由于各式各样的细胞种群数据集的复杂性,要收集有用的生物学知识对计算工具也有新的要求。回顾之前的聚类方法,即对于不同功能的细胞识别是基于细胞表征相似性来实现区分的。当然,经典方法存在一定局限性,例如单细胞分辨率的损失;经典方法需要预知簇中的对象数量 (本文中指细胞亚群的规模数量)。
则该论文引入 ACCENSE
(Automatic classification of cellular expression by nonlinear stochastic embedding) 高维单细胞数据分析工具:
- 基于密度划分的非线性降维方法,降维步骤采用
t-Distributed Stochastic Neighbor Embedding (t-SNE)
算法 $^{[1]}$。 - 探索性数据分析,同时避免任何手动
阀门(阈值)
的需要,即有别于基于距离的方法 (离群点判定)、基于密度的方法 (密度阈值)。 - 化繁为简,在二维或三维图上展示多元细胞的表型。
再有,本论文将 ACCENSE 应用于 35 参数的质谱流式细胞技术,检测 CD8+ T 细胞的数量 (数据来自于特定的无病原和无菌小鼠),并将细胞分层到表型亚群中。即对于具体的聚类算法、降维算法中,特定的符号名称会以具体的对象名称替代。
正文
背景介绍
-
免疫系统包含了许多类型的细胞,它们在免疫应答过程中表现出多样化的功能和复杂方式的相互作用,即通过不同蛋白质的表达水平所定义,故个体细胞的功能与其细胞表型密切相关。这里启示我们,对于不同功能的细胞可通过细胞表型相似性进行聚类区分。
-
传统流式细胞技术和质谱流式细胞技术
- 传统流式细胞技术 (Flow Cytometry) $^{[2]}$ 中,用
荧光基因
标记的抗体染色,其蛋白质靶标通过单细胞分辨率的光发射信号进行量化。
由于有限的光谱和重叠的发射信号,每个细胞限制为 12-16 个参数。
-
质谱流式细胞技术 (Mass Cytometry) $^{[3]}$ ,使用
金属螯合探针
可以对多达 42 个参数的单个细胞进行量化。 -
传统流式细胞技术和质谱流式细胞技术相比,主要有两点不同:
- 标签系统的不同,前者主要使用各种荧光基团作为抗体的标签,后者则使用各种金属元素作为标签;
- 检测系统的不同,前者使用激光器和光电倍增管,而后者使用 ICP 质谱技术。
- 传统流式细胞技术 (Flow Cytometry) $^{[2]}$ 中,用
聚类算法
由 质谱流式细胞技术产生的高维数据
,以具有生物学意义的方式解释是具有挑战性的。然而,很多聚类工具是基于细胞的蛋白表达相似性进行细胞分类的,例如:
-
SPADE 算法
$^{[4,5]}$:SPADE 使用多元信息定义细胞簇,并在树状结构中显示潜在的表型层次结构。但尚有不足之处:- 一是单细胞分辨率的损失;
- 二是对目标集群数量的需要预知。
降维算法
同样,降维算法以蛋白质表达相似性,把空间组织的细胞群在低维空间聚集成不同的细胞亚群。
-
PCA 算法
:PCA降维的大致思想就是,挑选特征明显的、显得比较重要的信息保留下来。在本论文中,Newell 等人将主成分分析 (Principal component analysis,PCA) 应用于 25 参数的质谱流式细胞技术,检测人的 CD8+ T 细胞的数量,且使用前三种主成分 (3D-PCA) 分离细胞亚群。3D-PCA 以三个汇总变量表示数据,每个汇总变量都是原始维度的线性组合,并去捕获投影后数据的方差,直至其取值为最大值。然而,PCA 能在数据中所有的可能线性组合中找到最优表达,但也存在限制条件:线性投影可能太严格而不能产生精确的表示 $^{[6]}$ ( 引入 t-SNE 算法 )。 -
t-SNE 算法
$^{[7]}$:t-Distributed Stochastic Neighbor Embedding,数据降维与可视化的方法,具体的算法细节如下:- 让 ${x^{(i)}}$ 表示归一化 n 维蛋白质表达向量编码的细胞 i 表型 (i=1, 2, ..., M)。
- 若在 2D 平面图下,${y^{(i)}}$ 向量表示高维 ${x^{(i)}}$ 对应于低维的映射,它使得具有相似表型的 T 细胞彼此靠近嵌入,表型不相似的则嵌入相对较远的距离。
- 采用细胞 i 和 j 之间的成对概率 ${p_{i,j}}$ 表示 ${x^{(i)}}$ 与 ${x^{(j)}}$ 之间的相似性。
- 若在 2D 平面图下,成对概率 ${q_{i,j}}$ 表示 ${y^{(i)}}$ 与 ${y^{(j)}}$ 之间的相似性。
- 通过最小化 ${p_{i,j}}$ 与 ${q_{i,j}}$ 的 KL 散度 (可理解为代价函数),然后找出嵌入向量 ${y^{(i)}}$,即它让高维转低维的表示信息能最大程度被保存下来。
KL 散度 (详细见附录 1),Kullback-Leibler Divergence,又称相对熵,即描述两概率分布 P 和 Q 的差异。KL 散度公式 (1) 如下:
$$D_{KL}({p_{i,j}}|{q_{i,j}}) = \sum_{i,j} p_{i,j} log \frac{p_{i,j}}{q_{i,j}} \tag{1}$$
- ${y^{(i)}}$ 可以编码非线性关系,不像 PCA 中被约束为 ${x^{(i)}}$ 的线性组合。
-
最佳嵌入
是通过数值梯度下降法来确定的,即所有数据点的 KL 散度总和减小到最小 (详细见附录 2)。
识别细胞亚群
-
使用一个内核密度变换,从 t-SNE 的细胞散布图计算出一个复合图像 $K_\gamma(y)$:
$$K_\gamma(y) = exp(
-\frac{||y - y'||{2}}{2\gamma2}
)\tag{2}$$ -
在本论文中,$K_\gamma(y)$ 的
局部最大值
表示具有共同表型的 CD8+ T 细胞亚群,且使用了 matlab 的峰值检测算法识别这些局部最大值。当然,也可以在嵌入点上使用 K-Means 聚类算法来识别 T 细胞子集,但其要求事先指定簇的数量。
-
如何求得
局部最大值
,关键是对于公式 (2) 中 $\gamma$ 的参数设定多少有关。即通过比较不同的核-宽带 $\gamma$ 产生的结果,则存在一个 $\gamma$ 值为表型空间中存在的局部和全局特征提供了准确的粗粒度表示。从图 1-2 中可得,即启示我们可以以数据驱动的方式,近似地识别 CD8+ T 细胞的亚群。
相关图表
- 如图 1-1 所示,ACCENSE 应用于质谱高维数据。
(A) 质谱细胞计数数据集样本的图示。行对应于不同的细胞,而列对应于测量其表达 (细胞表面抗原和细胞内蛋白) 的不同标记的金属螯合抗体。每一元组对应于指示每个标记的表达水平的质荷比变换值 (反双曲函数)。(C) 来自SPF B6 小鼠的 CD8+ T 细胞的 2D t-SNE 图谱。每个点代表来自训练集的一个细胞 (M = 18304),且数据点是通过对原始数据集进行下采样得到。(D) 通过使用基于内核密度变换 ($K_{\gamma}(y),{,},\gamma = 7$),将细胞的局部概率密度嵌入 (C) 的复合图像。并使用标准的峰值检测算法进行识别局部最大值,在二维密度图表示表型亚群的中心。
- 如图 1-2 所示,展示了峰值随着 $\gamma$ 的增加而变化。
附录
1 t-SNE 中的概率
$p_{i,j}$ 概率
基于蛋白质相似性,设 $p_{j|i}$ (i,j = 1, 2, ..., M) 表示细胞 i 将选择细胞 j 作为其最近邻的概率 ( $p_{j|i}$ 越大,$x^{(i)} 和 x^{(j)}$ 越近 ):
$$
p_{j|i} = \frac{
exp({-d_{i,j}^2} / {
2\sigma_i^2})
}{
\sum_{k \neq i} exp({-d_{i,k}^2} / {
2\sigma_i^2})
}, d_{i,j} = ||x^{(i)} - x^{(j)}||_2
\tag{3}
$$
对于概率 $p_{j|i}$ 的几点说明:
-
$d_{i,j}$ 可以使用其他距离范式替代欧式距离范式;
-
原始的 SNE 算法是不对称的,为简化梯度公式,t-SNE 中让公式 (3) 的条件概率是对称的。即初始化 $p_{i|i} = 0$,对于任意的 $p_{i|j} = p_{j|i}$,可得:
$$
p_{i,j} = \frac{
p_{j|i} + p_{i|j}
}{2M} = \frac{
exp({-d_{i,j}^2} / {
2\sigma_i^2})
}{
\sum_{k \neq i} exp({-d_{i,k}^2} / {
2\sigma_i^2})
}
\tag{4}
$$ -
不同的点 $x_i$,带宽 $\sigma_i$ 的取值也是不同的。
-
公式 (3) 中的带宽 $\sigma_i$ 是确保对于每一个细胞都有相同的复杂度 (Complexity)。复杂度可理解为一个点附近的
有效近邻点个数
。 -
定义复杂度为 $P_i = 2^{H_{j|i}}$,其近似地解释为细胞 i 的最近邻点的数量。
-
定义 $p_{j|i}$ 的香农熵 (信息熵) 为 $H_{j|i} = - \sum_j p_{j|i} \log_2 p_{j|i}$,且 $H_{j|i}$ 随着 $\sigma_i$ 的增加而增加。
在本论文中,t-SNE 图谱的复杂度被设定为 30,即 10-50 范围内的复杂度对最终结果的影响不大 (较好的鲁棒性)。
-
$q_{i,j}$ 概率
对于低维度下的 ${y_i}$,在原始的 SNE 算法 $^{[7]}$ 中 Hinton 和 Rowers 引用高斯核函数 (Gaussian Kernels) 定义 $q_{i,j}$,但在低维表达中发现了 拥挤问题
。
拥挤问题
:就是说各个簇聚集在一起,无法区分。譬如,有一高维度数据在降维到 10 维下可以有很好的表达,但是降维到两维后无法得到可信映射。具体情况是,10 维中有数个点之间两两等距离的,在二维下就无法得到可信的映射结果。
进一步说明,假设一个以数据点 $x^i$ 为中心,半径为 r 的 m 维球(三维空间就是球),其体积是按 $r^m$ 增长的,假设数据点是在 m 维球中均匀分布的,我们来看看其他数据点与 $x^i$ 的距离随维度增大而产生的变化。
t-SNE 减轻了拥挤问题,即使用更加偏重长尾分布的方式来将距离转换为概率分布 $^{[8]}$,故有 $q_{i,j}$:
$$
q_{i,j} = \frac{
(1 + \Delta_{i,j}2){-1}
}{
\sum_{k \neq i} (1 + \Delta_{i,k}2){-1}
}, \Delta_{i,j} = ||y^{(i)} - y^{(j)}||_2
\tag{5}
$$
同样地,对于概率 $q_{i,j}$ 的几点说明:
- $\Delta_{i,j}$ 可以使用其他距离范式替代欧式距离范式;
- 原始的 SNE 算法是不对称的,为简化梯度公式,t-SNE 中让公式 (5) 的条件概率是对称的。即初始化 $q_{i|i}=0$,对于任意的 $q_{i|j} = q_{j|i}$。
2 数值梯度下降法
- 在 [7] 中的概述过程,获得优化的梯度公式,如下所示:
$$
\frac{
\partial D_{KL}({p_{i,j}} | {q_{i,j}})
}{
\partial_{y_t}^{(i)}
} = 4 \sum_j \frac{
(p_{i,j} - q_{i,j})
}{
(1 + ||y_t^{(i)} - y_t{(j)}||2)
}
(y_t^{(i)} - y_t^{(j)})
\tag{6}
$$
-
通过梯度下降法迭代计算局部最大值:
$$
y_{t+1}^{(i)} = y_{t}^{(i)} + \eta(t) \frac{
\partial D_{KL}({p_{i,j}} | {q_{i,j}})
}{
\partial_{y_t}^{(i)}
}- \alpha(t)(y_{t}^{(i)} - y_{t-1}^{(i)})
\tag{7}
$$
- $y_t^{(i)}$ 表示迭代 t 次的解,$\eta(t)$ 表示学习速率,$\alpha(t)$ 表示迭代 t 次的动量。
- 学习速率初始值为 $\eta(t) = 100,^{[9]}$,且动能量 $\alpha(t)$ 设定为:
$$
\alpha(t) = \begin{cases} 0.8, & t < 300 \
0.5, & t \geq 300 \end{cases}
$$ - \alpha(t)(y_{t}^{(i)} - y_{t-1}^{(i)})
不足
- t-SNE 主要用于可视化,很难用于其他目的。譬如测试集合降维,因为他没有显式的预估部分,不能在测试集合直接降维。
- 关于核-带宽 $\gamma$ 参数设定问题:文中展示了 $\gamma$ 参数的大小与识别细胞亚群能力的数量关系。然而,数据驱动方式虽能实现自动聚类,但缺乏对于 $\gamma$ 参数设定范围该如何控制的说明。
参考
[1] Maaten L, Hinton G. Visualizing data using t-SNE [J]. Journal of machine learning research, 2008, 9(Nov): 2579-2605.
[2] Cantor H, Simpson E, Sato V L, et al. And functional studies of peripheral t-cells binding different amounts of fluorescent anti-thy 1.2 (theta) Antibody using a fluorescence--activated cell sorter (FACS) [J]. 1975.
[3] Bendall S C, Nolan G P, Roederer M, et al. A deep profiler's guide to cytometry [J]. Trends in immunology, 2012, 33(7): 323-332.
[4] Qiu P, Simonds E F, Bendall S C, et al. Extracting a cellular hierarchy from high-dimensional cytometry data with SPADE [J]. Nature biotechnology, 2011, 29(10): 886.
[5] Bendall S C, Simonds E F, Qiu P, et al. Single-cell mass cytometry of differential immune and drug responses across a human hematopoietic continuum [J]. Science, 2011, 332(6030): 687-696.
[6] Van Der Maaten L, Postma E, Van den Herik J. Dimensionality reduction: a comparative [J]. J Mach Learn Res, 2009, 10: 66-71.
[7] Maaten L, Hinton G. Visualizing data using t-SNE [J]. Journal of machine learning research, 2008, 9(Nov): 2579-2605.
[8] Chrispher. t-SNE 完整笔记 [OL]. www.datakit.cn. 2017.
[9] Jacobs R A. Increased rates of convergence through learning rate adaptation[J]. Neural networks, 1988, 1(4): 295-307.
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