Mfuzz进行时序表达聚类分析(Mac)

作者: dandanwu90 | 来源:发表于2019-09-26 16:39 被阅读0次

    懒癌的我全靠Jimmy催着学习,4月份答应交这份作业的,离中间被催又过了一个多月,今天完成啦。

    数据来源: 拟南芥RNA-seq转录组分析-salmon(Mac版)
    上游分析为salmon直接定量分析(纯Mac版),下游分析如下:

    1. 软件安装

    如果有直接library("包名"),但这一步没有安装的,直接用install.packages("包名安装"),如果安装不成功,用BiocManager::install("包名"),详情参考R包升级报错成常态,搜索告诉你。。。

    #清空环境
    rm(list = ls()) 
    options(stringsAsFactors = F)
    #设置镜像
    options()$repos 
    options()$BioC_mirror
    options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/")
    options("repos" = c(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/"))
    options()$repos 
    options()$BioC_mirror
    
    install.packages("tidyverse") ; library(tidyverse)
    install.packages("optparse") ; library(optparse)
    install.packages("UpSetR") ; library(UpSetR)
    install.packages("rjson") ; library(rjson)
    install.packages("Mfuzz"); library(Mfuzz)
    # https://bioconductor.org/packages/release/bioc/html/GEOquery.html
    if (!requireNamespace("BiocManager", quietly = TRUE))
      install.packages("BiocManager")
    BiocManager::install(c("tximport","KEGG.db","DESeq2","edgeR" ,"org.At.tair.db","pheatmap","AnnotationHub"),ask = F,update = F)
    BiocManager::install(c("clusterProfiler","limma","DOSE","GenomicFeatures","RColorBrewer"),ask = F,update = F)
    

    2. 打开Rstudio,加载salmon得到的counts

    2.1 加载到counts所在的路径
    #setwd将Rstudio的工作目录设置到存储counts的路径
    setwd("~/data/")
    getwd()
    dir=getwd()
    files=list.files(pattern = "*sf",dir,recursive = T)
    files=file.path(dir,files)
    all(file.exists(files))
    
    2.2 注释信息获取
    #注释信息的数据库,目前最新的工具包叫做AnnotationHub
    library(AnnotationHub)
    #此报错不定期出现,有时加载很多次都会出现如图ah1的报错,可能是网络原因,ah2位加载成功, 
    ah <- AnnotationHub()
    #查找包中拟南芥的数据
    ath <- query(ah,'Arabidopsis thaliana')
    #下载最新的注释ID,此步骤会出现ah一步类似的报错,多试几次
    ath_tx <- ath[['AH52247']]
    #提取数据库中GENEID信息
    columns(ath_tx)
    k <- keys(ath_tx,keytype = "GENEID")
    df <- select(ath_tx, keys=k, keytype = "GENEID",columns = "TXNAME")
    tx2gene <- df[,2:1]
    
    2.3 加载数据
    library('tximport')
    library('readr')
    txi=tximport(files ,type = "salmon",tx2gene = tx2gene)
    head(txi)
    head(txi$length)
    files
    # 加载stringr包,为了得到将txi的列名定义为样本名
    library(stringr)
    # 以'\'为分隔符,将含有quant.sf的路径分割,并提第七列---取样本名(ERR1698194_quant)
    t1=sapply(strsplit(files,'\\/'),function(x)x[6])
    # txi 的列counts的列名为样本名,
    colnames(txi$counts)=sapply(strsplit(t1,'_'),function(x)x[1])
    tmp=txi$counts
    head(tmp)
    # 1为行,2为列,将列都转化为整数
    exprSet=apply(tmp,2, as.integer)
    rownames(exprSet)=rownames(tmp)
    #查看表达两信息
    head(exprSet)
    dim(exprSet)
    exprSet=as.data.frame(exprSet)
    save(exprSet,file=paste0('quants-exprSet.Rdata'))
    
    #准备样本信息
    sampleTable=read.csv("sampleTable.txt",sep="\t",header = FALSE)
    colnames(sampleTable)=c("sample","group_list")
    rownames(sampleTable)=sampleTable[,1]
    sampleTable=sampleTable[,-1,drop=FALSE]
    sampleTable$group_list=paste0("day",sampleTable$group_list)
    
    # 将counts和样品名对应
    names(txi)
    head(txi$counts)
    head(txi$length)
    colnames(txi$length)=colnames(txi$counts)
    colnames(txi$abundance)=colnames(txi$counts)
    txi$counts[1:4,1:4]
    

    3. 差异分析

    分三步: 构建矩阵-均一化-表达矩阵

    3.1 构建矩阵
    library('DESeq2')
    dds<-DESeqDataSetFromTximport(txi,sampleTable,design = ~group_list)
    dim(dds)
    #数据过滤
    dds <- dds[rowSums(counts(dds))>1,]
    dim(dds)
    
    suppressMessages(dds2 <- DESeq(dds))
    res <- results(dds2)
    summary(res)
    
    3.2 均一化
    rld=rlogTransformation(dds2)
    exprSet_new=assay(rld)
    head(exprSet_new)
    dim(exprSet_new)
    
    3.3 表达矩阵
    resultsNames(dds2)
    res0vs1= results(dds2,contrast = c("group_list","day1","day0"))
    resOrdered1=res0vs1[order(res0vs1$padj),]
    resOrdered1=as.data.frame(resOrdered1)
    head(resOrdered1)
    
    library("org.At.tair.db")
    library("KEGG.db")
    library("clusterProfiler")
    library('ggplot2')
    resOrdered1$gene_id=rownames(resOrdered1)
    id2symbol=toTable(org.At.tairSYMBOL)
    resOrdered1=merge(resOrdered1,id2symbol,by='gene_id')
    
    DEG=resOrdered1
    colnames(DEG)=colnames(DEG)=c('gene_id' ,'baseMean','logFC','lfcSE','stat','pvalue' , 'P.Value' , 'symbol')
    
    DEG$symbol=as.character(DEG$symbol)
    DEG_filter=DEG[nchar(DEG$symbol)>1,]
    DEG_filter=DEG_filter[!is.na(DEG_filter$symbol),]
    

    4. 时序表达聚类分析

    用3.2 均一化(normalisation)后的表达矩阵

    library("Mfuzz")
    library('dplyr')
    
    count <- data.matrix(exprSet_new)
    eset <- new("ExpressionSet",exprs = count)
    # 根据标准差去除样本间差异太小的基因
    eset <- filter.std(eset,min.std=0)
    eset <- standardise(eset)
    
    image.png
    # 如何决定聚类个数?
    c <- 6
    #  评估出最佳的m值
    m <- mestimate(eset)
    # 聚类
    cl <- mfuzz(eset, c = c, m = m)
    
    mfuzz.plot(
      eset,
      cl,
      mfrow=c(2,3),
      new.window= FALSE)
    

    聚类个数位6


    image.png

    聚类个数位16


    image.png

    基因表达聚类,黄线和绿线表示随时间变化表达量相差小的基因,红线和紫线表明随时间变化表大量相差大的基因。

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