methylKit 是一个用于分析甲基化测序数据的R包,不仅支持WGBS
,RRBS
和目的区域甲基化测序,还支持oxBS-sq
, TAB-seq
等分析5hmc
的数据。 其核心功能是差异甲基化分析和差异甲基化位点和区域的注释。
安装过程如下:
source(“http://bioconductor.org/biocLite.R“)
biocLite(“methylKit”)
推荐使用最新版本的R进行安装,这样可以使用最新版本的methylKist
。
利用methylKit
做差异分析包括3步
1. 读取原始数据
每个样本一个原始数据,methylKit
支持两种格式的methylation calling
文件
-
纯文本格式
内容如下
每一行是一个甲基化位点,coverage
代表覆盖这个位点的reads数,freqC
代表甲基化C的比例,freqT
代表非甲基化C的比例。这种纯文本格式内容非常直观,文件大小相比bam 文件小很多,读取的速度更快。
纯文本格式的读取过程如下
treatment
参数指定样本的分组,0代表control
组,1代表treatment
组
-
bam文件
直接读取Bismark
软件比对产生的bam文件,通过processBismarkAln
实现
用法如下:
2. 合并所有样本的数据
将所有样本的甲基化情况合并,得到所有样本的甲基化表达谱,用法如下
meth=unite(myobj, destrand=FALSE)
meth
中的内容如下,其实就是之前的methylation calling
文件的合并
在合并的过程中,默认情况下,只有所有的样本都包含该位点时,才会保留,本质就是取的所有样本的交集,如果你想要取并集,可以修改min.per.group
参数的值,该参数的值代表每组中至少有多少个样本覆盖该位点时才保留,如果设置为1,就是取并集。
meth.min=unite(myobj,min.per.group=1L)
3. 执行差异分析
通过calculateDiffMeth
函数来执行差异甲基化分析,用法如下
myDiff=calculateDiffMeth(meth)
根据甲基化C是变多了还是变少了,可以将差异甲基化的结果分为两大类:
-
hypermethylated
-
hypomethylated
hypermethylated
表示相比control
组,treatment
组中的甲基化C更多;hypomethylated
则相反,表示treatment
组中的甲基化C比control
组中少。
采用getMethylDiff
函数提取差异分析的结果,用法如下
difference
函数表明差异的阈值,只有差异大于该阈值时,才会保留,起始就是meth.diff
的值,注意是绝对值大于difference
的值。
除了difference
阈值之外,还有qvalue
阈值,小于该阈值的结果保留。在methylKit
中,校正p值采用的是SILM
算法,和我们常规的BH
算法不同。type
参数定义差异的类型,如果你只关注hypermethylated
或者hypomethylated
,可以设置type 参数的值,单独筛选。
在methylKit
中,它的差异分析总是针对合并后的甲基化表达谱,如果你的甲基化表达谱每一行是一个甲基化位点,那么差异分析的结果就是差异甲基化位点;如果你的表达谱每一行是一个甲基化区域,那么差异分析的结果就是差异甲基化区域。上面的例子都是针对差异甲基化位点的,下面看下差异甲基化区域的分析。
首先遇到的问题就是甲基化区域如何界定,在methylKit
中,按照滑动窗口的方式定义甲基化区域,默认窗口大小为10000
bp ,步长为10000bp,通过tileMethylCounts
函数实现。
完整的差异甲基化区域分析的代码如下:
网友评论
C:/Users/12165/Desktop/生信/WES/young85_CpG.txt, That file doesn't exist !!!" 这是为什什么呢? *_GpG.txt文件是哪里生成的?
sample.id="SRX016285", assembly="mm9",
read.context="CpG",save.folder=mySaveFolder)
这是我的代码,希望能帮到你,位置要写对,我开始也是一直读取不进去,加上location就好了