单细胞转录组学习笔记-4

作者: 刘小泽 | 来源:发表于2019-06-15 23:15 被阅读18次

    刘小泽写于19.6.14-15
    笔记目的:根据生信技能树的单细胞转录组课程探索smart-seq2技术相关的分析技术
    课程链接在:http://jm.grazy.cn/index/mulitcourse/detail.html?cid=53
    第二单元第二、三讲:获取Github代码包以及准备工作

    先下载代码包

    github代码在:https://github.com/jmzeng1314/scRNA_smart_seq2/archive/master.zip

    首先进入RNA-seq目录,从step0-step9是对常规转录组的一个回顾

    准备工作之R包

    从step0开始,代码注释蛮详细的,我会挑选重要的部分写到这里,其他可以自行看代码学习,下面就是主要利用Rstudio进行操作了

    • 一个好习惯,做新项目时记得清空之前的变量,使用rm(list = ls())

    • 有的R包比较大,经常需要加载其他的动态库dynamically loaded libraries (DLLs),例如:

      > length(loadedNamespaces()) 
      [1] 34
      > library(Seurat) #加载一个seurat包会出现接近60个依赖的动态库
      > length(loadedNamespaces())
      [1] 96
      

      如果不设置,就会因为加载数量超限制而报错(https://developer.r-project.org/Blog/public/2018/03/23/maximum-number-of-dlls/)

      在R3.3版本中,只能有100个固定的动态库限制,到了3.4版本以后,就能够使用Sys.setenv(R_MAX_NUM_DLLS=xxx)进行设置,而这个数字根据个人情况设定

    • 在新建数据框时会自动将字符串的列当做是因子型向量,但是我们常常还需要对字符进行修改,因此需要先将这个设置取消:options(stringsAsFactors = F)

    • 因为Bioconductor下载方法的变动,要学会使用BiocManager::install这个命令,例如:BiocManager::install(c( 'scran'),ask = F,update = F),新加的两个选项表示:不要问我要不要下载,直接下!还有不要问我要不要更新,不更新!【除非不升级就报错】

    • 下载包存在网络的限制,毕竟R语言是国外开发,因此可以通过options()$repos看看常规CRAN安装R包的使用镜像(一般情况下是rstudio公司的),但是这里我们可以自行设置:比如设置成清华源:options("repos" = c(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/")),另外Bioconductor也有自己的镜像设置:修改一下options即可,options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/")

      # 总结一下,可以先用if判断再进行设置
      if(length(getOption("CRAN"))==0) options(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/")
      
      if(!require("BiocManager")) install.packages("BiocManager",update = F,ask = F)
      
      if(length(getOption("BioC_mirror"))==0) options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/")
      
    • 如何使用if判断语句进行包的安装

      if (!requireNamespace("BiocManager", quietly = TRUE)) 
        install.packages("BiocManager") 
      

    最后,就是安装所有必备的R包(包括CRAN和Bioconductor)

    # 快速安装cran包
    cran_pkgs <- c("ggfortify","FactoMineR","factoextra")
    for (pkg in cran_pkgs){
      if (! require(pkg,character.only=T) ) {
        install.packages(pkg,ask = F,update = F)
        require(pkg,character.only=T) 
        }
    }
    # Bioconductor包
    library(BiocManager)
    bioc_pkgs <- c("scran","TxDb.Mmusculus.UCSC.mm10.knownGene","org.Mm.eg.db","genefu","org.Hs.eg.db","TxDb.Hsapiens.UCSC.hg38.knownGene")
    for (pkg in bioc_pkgs){
      if (! require(pkg,character.only=T) ) {
        BiocManager::install(pkg,ask = F,update = F)
        require(pkg,character.only=T) 
        }
     }
    

    目的:利用R包重复文章的基因数量图、聚类图、基因在聚类图中的热图、每个基因表达量在不同cluster的小提琴图

    准备工作之表达矩阵

    看到文章中有两个表达矩阵,其中第一个是原始表达矩阵(均为整数),第二个是rpkm是表达量归一化后的值(包含了小数),因此也能说明为何第二个文件比第一个要大。

    RPKM这个指标可以这样理解:R表示reads,K表示基因长度,M表示文库大小,它实际上做的事情也就是去掉基因长度和测序文库的差异对reads比对数量的影响

    好,先说说为什么要去掉文库大小差异:以这篇文章中的图片为例:https://sci-hub.tw/https://doi.org/10.1186/s13059-018-1466-5

    比如有两个样本,要比较三个基因ABC的表达量,图中越高表示比对到这个基因的reads数越多,因此在同一个样本中可以看到C>B>A,但是不同的两个样本呢?

    测序量不同,比大小是不公平的

    举个夸张的例子:上面👆的样本(简称"样本1")中一共比对了100万条reads,其中C基因比对到了100条;下面👇的样本(简称"样本2")中一共比对了100条reads,其中C基因比对了10条。虽然最终的数据显示:样本1中C基因比样本2的C基因比对reads数多了90条,但是考虑到实际样本情况就是,样本2中C基因可是占据了总比对量的十分之一,而样本1呢?很小很小…。因此去掉M(也就是每个样本的测序文库大小,以Million为单位)的影响,才是比较客观的。

    同样的,有的基因长,有的基因短,开发RPKM的人就想:基因长的比对到的reads也会更多,因此也去掉了这个差异(除以K)

    但是!这个概念目前在统计上是错误的,因此并不建议使用这个指标

    操作表达矩阵

    读取

    # 保留头信息,并设置分隔符为制表符tab
    a=read.table('../GSE111229_Mammary_Tumor_fibroblasts_768samples_rawCounts.txt.gz',header = T ,sep = '\t')
    
    # 读进来以后,简单查看一下
    a[1:6,1:4]
    

    过滤

    可以看到很多基因对应的表达量都是0

    下面会用到循环,但是为了方便理解,先拿其中一行为例:

    x=a[1,] #比如将第一行提取出来赋值给x
    # 将x中的值与1作比较(利用了R语言的循环补齐,也就是说,它会将768个值一个一个去和1做比较,然后返回逻辑值TRUE或者FALSE)
    x>1
    # 然后利用table()函数检查x中有多少是TRUE,多少是FALSE
    table(x>1)
    # FALSE  TRUE 
    #   766     2 
    # 可以看到第一行这个基因在768个细胞中只有两个细胞有表达,我们认为:这两个细胞也不好分组,cluster聚类也没有什么意义,因此可以去掉
    # 但是这个细胞量设置成多少合适呢?总不能不能一股脑全设成2吧
    floor(ncol(a)/50) # 用总列数除以50然后向下取整,结果就是15
    # 也就是说,只要一行中至少要在15个样本中有表达量
    # 上面知道了 x>1 返回逻辑值0和1,0为FALSE,1为TRUE。现在我们要找一行中总共有多少TRUE,就用sum计算一下(因为会忽略掉0的影响)
    sum(x>1) > floor(ncol(a)/50)
    # 当然第一行会返回FALSE,也就表明我们要去掉这一行内容
    a[sum(x>1) > floor(ncol(a)/50),]# 就把不符合要求的第一行去掉了
    

    上面,我们对一行的筛选与过滤有了认识,那么一个表达矩阵有2万多行,怎样实现循环操作呢?

    # 专业的事情交给专业的工具去处理=》apply
    # 要使用apply函数先要明白三个问题:对谁进行操作?对行还是列进行操作?操作什么?
    apply(a, 1, function(x) {sum(x>1) > floor(ncol(a)/50)})
    # 1:对a这个矩阵进行操作
    # 2:对行(也就是1表示)进行操作[补充:如果对列操作,用2表示]
    # 3:操作什么?复杂的操作先写上 function(x){},这是一个标准格式,然后大括号中是要进行操作的函数,于是我们就可以将我们之前写的那一行粘到这里,最后仍然是逻辑值
    

    最后,有多少行就会返回多少个apply判断的逻辑值,显示FALSE的就是要过滤掉的,于是再用行筛选完成整个操作,并赋值给一个新变量:

    dat=a[apply(a,1, function(x) sum(x>1) > floor(ncol(a)/50)),] 
    dim(dat)
    # 12198   768 最终就保留了12198个基因
    

    其实原文保留的更少,原文只有10835个基因

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